Metódy na konečné zastavenie krvácania zahŕňajú. Metódy na konečné zastavenie krvácania

Fyzikálne metódy na zastavenie krvácania

Fyzikálne metódy sa inak nazývajú tepelné, keďže sú založené na použití nízkych alebo vysokých teplôt.

VYSTAVENIE NÍZKEJ TEPLOTE

Mechanizmom hemostatického účinku hypotermie je vazospazmus, spomalenie prietoku krvi a vaskulárna trombóza.

lokálna hypotermia

Aby sa zabránilo krvácaniu a tvorbe hematómov v skorom pooperačnom období, na ranu sa na 1-2 hodiny umiestni ľadový obklad. Rovnakú metódu možno použiť pri krvácaní z nosa (ľadový obklad na mostíku nosa), žalúdočnom krvácaní (ľadový obklad na epigastrickej oblasti).

Pri žalúdočnom krvácaní je tiež možné zaviesť studené (+4 ° C) roztoky do žalúdka cez hadičku (zvyčajne sa používajú chemické a biologické hemostatické činidlá).

Kryochirurgia

Kryochirurgia je špeciálna oblasť chirurgie. Používajú sa tu veľmi nízke teploty. Lokálne zmrazenie sa používa pri operáciách mozgu, pečene, pri liečbe cievnych nádorov.

VYSTAVENIE VYSOKEJ TEPLOTE

Mechanizmom hemostatického účinku vysokej teploty je koagulácia proteínu cievnej steny, urýchlenie zrážania krvi.

Použitie horúcich roztokov

Metódu je možné aplikovať počas operácie. Napríklad pri difúznom krvácaní z rany, pri parenchymálnom krvácaní z pečene, lôžka žlčníka atď. je monitorovaná.

Diatermokoagulácia

Nevýhody elektrokoagulačnej metódy: nepoužiteľné na veľké cievy, pri nesprávnej nadmernej koagulácii dochádza k rozsiahlej nekróze, ktorá môže brániť následnému hojeniu rany.

Metódu je možné použiť pri krvácaní z vnútorných orgánov (koagulácia krvácajúcej cievy v sliznici žalúdka cez fibrogastroskop) a pod.. Elektrokoaguláciou je možné oddeľovať aj tkanivá pri súčasnej koagulácii drobných cievok (nástrojom je elektronôž), ktorý značne uľahčuje množstvo operácií, takže ako rez v podstate nie je sprevádzaný krvácaním.

Na základe antiblastických úvah je elektronôž široko používaný v onkologickej praxi.

Laserová fotokoagulácia, plazmový skalpel

Metódy súvisia s novými technológiami v chirurgii. Sú založené na rovnakých princípoch (vytvorenie lokálnej koagulačnej nekrózy) ako diatermokoagulácia, umožňujú však zastaviť krvácanie dávkovanejšie a šetrnejšie. Toto je obzvlášť dôležité pri krvácaní z parenchýmu.

Je možné použiť aj metódu na separáciu tkaniva (plazmový skalpel). Laserová fotokoagulácia a plazmový skalpel sú vysoko účinné a zvyšujú možnosti klasickej a endoskopickej chirurgie.

3.3 Chemické metódy na konečné zastavenie krvácania

Chemické metódy na zastavenie krvácania sa používajú len na krvácanie z malých ciev, parenchýmu a kapilár, keďže krvácanie zo žily stredného alebo veľkého kalibru a ešte viac z tepny sa dá zastaviť len mechanicky.

Podľa spôsobu aplikácie sa všetky chemické metódy delia na lokálne a všeobecné (resp. resorpčné pôsobenie).

Lokálne hemostatické činidlá sa používajú na zastavenie krvácania v rane, v žalúdku, na iných slizniciach.

Hlavné lieky:

1. Peroxid vodíka. Používa sa pri krvácaní do rany, pôsobí tak, že urýchľuje tvorbu trombu.

2. Vazokonstriktory (adrenalín). Používa sa na prevenciu krvácania pri extrakcii zubov, vstrekuje sa do submukóznej vrstvy pri žalúdočnom krvácaní atď.

3. Inhibítory fibrinolýzy – kyselina epsilon-aminokaprónová. Zavedené do žalúdka so žalúdočným krvácaním.

4. Želatínové prípravky (gelaspon). Sú to špongie vyrobené z penovej želatíny. Urýchľujú hemostázu, pretože pri kontakte so želatínou dochádza k poškodeniu krvných doštičiek a k uvoľneniu faktorov, ktoré urýchľujú tvorbu krvnej zrazeniny. Okrem toho majú tlmiaci účinok. Používa sa na zastavenie krvácania na operačnej sále alebo pri náhodnej rane.

5. Vosk. Využíva sa jeho upchávkový efekt. Poškodené ploché kosti lebky sú „prekryté“ voskom (najmä pri operácii trepanácie lebky).

6. Karbazochróm. Používa sa pri kapilárnom a parenchymálnom krvácaní. Znižuje vaskulárnu permeabilitu, normalizuje mikrocirkuláciu. Na povrch rany sa aplikujú utierky navlhčené roztokom.

Hemostatické činidlá s resorpčným účinkom sa zavádzajú do tela pacienta, čo spôsobuje zrýchlenie procesu trombózy v poškodených cievach.

Hlavné lieky:

1. Inhibítory fibrinolýzy (kyselina epsilon-aminokaprónová).

2. Chlorid vápenatý – používa sa pri hypokalciémii, keďže ióny vápnika sú jedným z faktorov systému zrážania krvi.

3. Látky, ktoré urýchľujú tvorbu tromboplastínu – dicynon, etamsylát (navyše normalizujú priepustnosť cievnej steny a mikrocirkuláciu).

4. Látky špecifického účinku. Napríklad pomocou pituitrína pri krvácanie z maternice: liek spôsobuje sťahovanie svalov maternice, čím sa zmenšuje priesvit ciev maternice a tým napomáha k zastaveniu krvácania.

5. Syntetické analógy vitamínu K (Vikasol). Podporovať syntézu protrombínu. Zvlášť indikované pri porušení funkcie pečene (napríklad s cholemickým krvácaním).

6. Látky, ktoré normalizujú priepustnosť cievnej steny (kyselina askorbová, rutín, karbazohrom).

Konečné zastavenie krvácania môže byť mechanické, fyzikálne, chemické a biologické.

Mechanické spôsoby zastavenia krvácania sa vykonávajú v šatni alebo na operačnej sále pri chirurgickom ošetrení rany alebo počas operácie a sú nasledovné:

a) upnutie cievy svorkou, po ktorej nasleduje aplikácia ligatúry;

b) v prípade nebezpečenstva vykĺznutia podviazania sa použije metóda čipovania cievy, t.j. a zviazané;

c) podviazanie cievy v celom rozsahu.

Pri difúznom krvácaní z rany, kedy nie je možné zastaviť krvácanie ani hromadným zošitím tkanív, sa v celom rozsahu používa metóda podviazania cievy zásobujúcej túto oblasť. Za týmto účelom sa nádoba odkryje a obviaže samostatným rezom nad ranou.

V prípade poranenia veľkých hlavných ciev závisí zachovanie životaschopnosti orgánu od trvania ischémie. Ako je známe, nezvratné zmeny začínajú 2-4 hodiny po nástupe ischémie, preto sa pri zastavení krvácania v záujme zachovania životaschopnosti končatiny (dočasné obnovenie krvného zásobenia) používa metóda dočasného intravaskulárneho skratu. Technika je jednoduchá a spočíva v zavedení akejkoľvek husto elastickej trubice do lúmenu poškodenej tepny s fixáciou jej koncov pomocou ligatúr. Takýto „shunt“ môže fungovať niekoľko hodín až jeden deň.

Ideálnym spôsobom zastavenia krvácania pri poškodení veľkých ciev je cievna sutúra, ktorá obnoví kontinuitu cievneho riečiska. Nevyhnutnou podmienkou aplikácie cievneho stehu je prítomnosť cievnych svoriek, atraumatických ihiel a znalosť techniky cievneho stehu chirurga.

Existujú dva typy cievnych stehov: bočné a kruhové. Bočná sutúra sa používa na okrajové poranenie cievy, na vykonávanie pozdĺžneho (ak to veľkosť priesvitu cievy dovoľuje) alebo priečneho zošívania priesvitu. V prípade okrajového defektu tepny možno na jej náhradu použiť náplasť z autožily alebo syntetického materiálu. Pri úplnom prerušení alebo priesečníku tepny sa jej konce izolujú a na dva protiľahlé okraje cievy sa umiestnia dva atraumatické stehy, ktoré sa spoja, stehy sa zviažu a použijú ako držiaky, okraje cievy sa zošijú s kontinuálnym točivým stehom. Pri výraznom defekte cievy sa jej kontinuita obnoví aloprotézou. Pri aplikácii cievneho stehu a absencii držiaka cievnej ihly možno použiť priamu svorku.

Fyzické spôsoby zastavenia krvácania spočívajú v použití vysokých a nízkych teplôt. Hemostatický účinok vysokej teploty je založený na jej redukčnom účinku na cievu a pri jej významnom počte sa zrážajú tkanivové bielkoviny a krv. Na tento účel sa najčastejšie používa izotonický roztok chloridu sodného zahriaty na 45-50 °C. V súčasnosti sa rozšírila elektrokoagulácia - jedna elektróda koagulátora vo forme olovenej platne cez gázu navlhčenú izotonickým roztokom chloridu sodného, tesnenie je pevne fixovaná na končatinu, druhá je elektróda voľná a keď sa dotkne hemostatickej svorky, dôjde ku koagulácii cievy. V lekárskej praxi sa ako skalpel začal používať laserový lúč, ktorý umožňuje vykonať operáciu bez krviprelievania. Nízka teplota pôsobí podobne ako vysoká teplota a spôsobuje v závislosti od veľkosti kŕče alebo koaguláciu tkanív. Na tento účel sa používa ľad, kryštalizovaný oxid uhličitý (suchý ľad), tekutý dusík.

Chemické metódy rozdelené na vonkajšie a vnútorné hemostatické činidlá. Vonkajšie sa používa 3-5% roztok peroxidu vodíka, roztok adrenalínu 1:1000 atď.. Vnútorné prostriedky sa skladajú z dvoch skupín: tie, ktoré spôsobujú vazokonstrikciu (ergotové preparáty, adrenalín, norepinefrín, mezatón atď.) a tie, ktoré zvýšiť zrážanlivosť krvi (vikasol, chlorid vápenatý, želatína, kyselina aminokaprónová, hemofób atď.).

Biologické metódy zastavenia krvácania sú založené na vonkajšom a vnútornom použití krvných produktov a ich zložiek (hemostatická špongia, fibrínový film, frakčná transfúzia malých dávok krvi, fibrinogén, čerstvá plazma).

Uloženie turniketu.

Štandardným postrojom je gumička 1,5 m dĺžka s retiazkou a háčikom na koncoch

Indikácie Metóda sa zvyčajne používa pri krvácaní z rán na končatinách, aj keď je možné použiť škrtidlo v oblasti ingvinálnej a axilárnej oblasti, ako aj na krku (v tomto prípade je neurovaskulárny zväzok na intaktnej strane chránené Cramerovou dlahou).

Hlavné indikácie pre aplikáciu turniketu sú:

Arteriálne krvácanie z rán končatín;

Akékoľvek masívne krvácanie z rán končatín.

Zvláštnosťou tejto metódy je úplné zastavenie prietoku krvi distálne od turniketu. To zaisťuje spoľahlivosť zastavenia krvácania, ale súčasne spôsobuje výraznú ischémiu tkaniva. Okrem toho môže turniket stlačiť nervy a iné formácie.

Všeobecné pravidlá pre aplikáciu turniketu:

· Pred aplikáciou turniketu zdvihnite končatinu.

· Turniket sa aplikuje proximálne k rane a čo najbližšie k nej.

· Pod turniket je potrebné dať handričku (oblečenie).

· Pri aplikácii turniketu sa urobia 2-3 kolá, ktoré sa rovnomerne roztiahnu, a zájazdy by nemali ležať jeden na druhom.

· Po priložení turniketu nezabudnite uviesť presný čas jeho aplikácie (zvyčajne sa pod turniket umiestni kus papiera s príslušným záznamom).

· Časť tela, kde je priložený turniket, musí byť prístupná na kontrolu.

Zranení z turniketov sú transportovaní a ošetrení ako prví. Kritériá pre správne aplikovaný turniket sú:

Zastavte krvácanie;

Ukončenie periférnej pulzácie;

Bledá a studená končatina.

Je mimoriadne dôležité, aby škrtidlo nebolo možné držať na dolných končatinách dlhšie ako 2 hodiny a na horných 1,5 hodiny. V opačnom prípade je možné vyvinúť nekrózu na končatine v dôsledku jej predĺženej ischémie.

Ak je potrebné prevážať postihnutého na dlhší čas, škrtidlo sa rozpustí každú hodinu asi na 10-15 minút, pričom sa táto metóda nahradí iným dočasným spôsobom zastavenia krvácania (tlak prstom).

Škrtidlo je potrebné odstrániť postupne, čím sa oslabí, s predbežným zavedením liekov proti bolesti.

Stláčanie tepien prstami.

Ide o pomerne jednoduchú metódu, ktorá nevyžaduje žiadne pomocné položky. Jeho hlavnou výhodou je schopnosť vykonávať čo najrýchlejšie. Nevýhodou je, že sa dá efektívne aplikovať len 10-15 minút, čiže je krátkodobý.

Indikácie Indikáciou pre stláčanie tepien prstami je masívne krvácanie z príslušného arteriálneho bazéna.

Tlak prstov je obzvlášť dôležitý v núdzových situáciách, pri príprave na inú metódu hemostázy, ako je turniket.

Stlačenie krvácajúcej cievy v rane.

Túto techniku často používajú chirurgovia, keď počas operácie dôjde ku krvácaniu. Miesto poškodenia cievy alebo cievy sa proximálne zovrie jedným alebo viacerými prstami. Zastaví sa krvácanie, rana sa odvodní a zvolí sa najvhodnejšia konečná metóda na zastavenie krvácania.

Maximálna flexia končatiny.

Metóda je účinná pri krvácaní zo stehna (maximálna flexia v bedrovom kĺbe), z predkolenia a chodidla (maximálna flexia v kolennom kĺbe), ruky a predlaktia (maximálna flexia v lakťovom kĺbe)

Indikácie na vykonanie maximálnej flexie sú rovnaké ako pri aplikácii turniketu. Metóda je menej spoľahlivá, ale zároveň menej traumatická. Maximálna flexia v lakťovom kĺbe sa často používa na zastavenie krvácania po prepichnutí kubitálnej žily (intravenózna infúzia, odber krvi na výskum).

Zvýšená poloha končatiny.

Metóda je mimoriadne jednoduchá - stačí zdvihnúť zranenú končatinu.

Indikácie na použitie - venózne alebo kapilárne krvácanie, najmä z rán na dolných končatinách.

Tlakový obväz.

Indikácie Tlakový obväz sa používa pri stredne ťažkom krvácaní z malých ciev, venóznom alebo kapilárnom krvácaní. Táto metóda je metódou voľby pri krvácaní z kŕčových žíl dolných končatín. Na zabránenie krvácania v ranom pooperačnom období (po flebektómii, sektorovej resekcii prsnej žľazy, mastektómii a pod.) je možné priložiť na ranu tlakový obväz.

Na aplikáciu tejto jednoduchej metódy je potrebný iba obväz a obväz.

Technika: Na ranu sa priloží niekoľko sterilných obrúskov (na vrchu sa niekedy vytvorí valček) a pevne sa obviažu. Pred aplikáciou bandáže na končatinu je potrebné dať jej vyvýšenú polohu. Obväz by sa mal aplikovať od okraja do stredu.

Tamponáda rany.

Metóda je indikovaná pri miernom krvácaní z malých ciev, kapilárnom a venóznom krvácaní v prítomnosti ranovej dutiny. Často sa používa v ordináciách. Dutina rany je tesne naplnená tampónom, ktorý sa na chvíľu ponechá. Zastaví sa krvácanie, získa sa čas a potom sa použije adekvátnejšia metóda.

Aplikácia svorky na krvácajúcu cievu.

Metóda je indikovaná na zastavenie krvácania počas operácie. Ak dôjde ku krvácaniu, chirurg aplikuje na krvácajúcu cievu špeciálnu hemostatickú svorku (Billrothova svorka). Krvácanie sa zastaví. Potom aplikujte konečnú metódu, najčastejšie - ligáciu cievy. Pri aplikácii svorky treba pamätať na to, že sa to musí robiť veľmi opatrne, pod vizuálnou kontrolou, inak sa do svorky môže dostať okrem poškodenej aj hlavná cieva alebo nerv, čo povedie k nepriaznivým následkom.

Dočasný posun.

Používa sa pri poškodení veľkých hlavných ciev, hlavne tepien, zastavenie prietoku krvi, ktoré môže viesť k nežiaducim následkom až ohroziť život pacienta.

Chirurg môže do poškodených koncov cievy vložiť hadičku (polyetylénovú, sklenenú) a fixovať ju dvoma ligatúrami. Krvný obeh v končatine je zachovaný, nedochádza ku krvácaniu. Takéto dočasné skraty fungujú niekoľko hodín a dokonca aj niekoľko dní, čo potom umožňuje vykonať cievnu sutúru alebo cievnu protézu.

Metódy na konečné zastavenie krvácania.

Metódy konečného zastavenia krvácania sa v závislosti od charakteru použitých metód delia na mechanické, fyzikálne (tepelné) a chemické.

mechanické metódy.

Mechanické metódy zastavenia krvácania sú najspoľahlivejšie. V prípade poškodenia veľkých ciev, ciev stredného kalibru, tepien vedie k spoľahlivej hemostáze iba použitie mechanických metód.

Podviazanie ciev.

Existujú dva typy ligácie ciev:

Bandážovanie cievy v rane;

Ligácia cievy v celom rozsahu.

Podviazanie cievy v rane.

Určite je vhodnejšie obviazať cievu v rane priamo v mieste poranenia. Tento spôsob zastavenia krvácania narúša prívod krvi do minimálneho množstva tkaniva.

Najčastejšie počas operácií chirurg aplikuje hemostatickú svorku na cievu a potom ligatúru (dočasnú metódu nahrádza konečnou). Alternatívou podviazania je klipovanie cievy – aplikácia kovových svoriek (svoriek) na cievu pomocou špeciálneho klipera. Táto metóda je široko používaná v endoskopickej chirurgii.

Celé podviazanie cievy

Podviazanie cievy sa zásadne líši od podviazania v rane. Tu hovoríme o podviazaní pomerne veľkého, často hlavného kmeňa proximálne od miesta poranenia. V tomto prípade ligatúra veľmi spoľahlivo blokuje prietok krvi hlavnou cievou, ale krvácanie, aj keď menej závažné, môže pokračovať v dôsledku kolaterálneho a spätného prietoku krvi.

Hlavnou nevýhodou podviazania cievy je, že krvné zásobenie je zbavené oveľa väčšieho množstva tkaniva ako pri podviazaní v rane. Táto metóda je zásadne horšia a používa sa ako nútené opatrenie.

Existujú dve indikácie pre ligáciu cievy.

Poškodená cieva sa nedá zistiť, čo sa stáva pri krvácaní z veľkej svalovej hmoty (masívne krvácanie z jazyka - podväzujú lingválnu artériu na krku v Pirogovovom trojuholníku; krvácanie zo sedacích svalov - podväzujú vnútornú iliakálnu artériu , atď.);

Sekundárne arozívne krvácanie z purulentnej alebo hnilobnej rany (obväz v rane je nespoľahlivý, pretože je možné poleptanie pahýľa cievy a opätovný výskyt krvácania, navyše manipulácie v hnisavej rane prispejú k progresii zápalového procesu).

Technika vykonávania v súlade s topografickými a anatomickými údajmi odkryje a podviaže cievu pozdĺž dĺžky proximálne k zóne poškodenia.

Šitie plavidiel.

V prípadoch, keď krvácajúca cieva nevyčnieva nad povrch rany a nie je možné ju zachytiť svorkou, kabelkou resp.Z-tvarovaný šev cez okolité tkanivá s následným utiahnutím závitu - tzv. flashing cievy

Krútenie, drvenie krvných ciev.

Metóda sa zriedka používa na krvácanie z malých žíl. Na žilu sa aplikuje svorka, nejaký čas je na cieve a potom sa odstráni. Okrem toho môžete svorku niekoľkokrát otočiť okolo svojej osi. V tomto prípade je stena cievy maximálne poranená a spoľahlivo trombovaná.

Tamponáda na rany, tlakový obväz.

Tamponáda rán a tlakový obväz sú metódy dočasného zastavenia krvácania, ale môžu sa stať aj definitívne. Po odstránení tlakového obväzu (zvyčajne na 2. – 3. deň) alebo odstránení tampónov (zvyčajne na 4. – 5. deň) môže dôjsť k zástave krvácania v dôsledku trombózy poškodených ciev.

Embolizácia ciev.

Metóda sa týka endovaskulárnej chirurgie. Používa sa pri krvácaní z vetiev pľúcnych tepien, koncových vetiev brušnej aorty a pod.. V tomto prípade sa podľa Seldingerovej metódy katetrizuje stehenná tepna, katéter sa privedie do miesta krvácania, kontrast vstrekne sa činidlo a po vykonaní röntgenových lúčov sa odhalí miesto poranenia (diagnostické štádium). Potom sa pozdĺž katétra na miesto poškodenia privedie umelá embólia (špirála, chemická látka: alkohol, polystyrén), ktorá prekryje lúmen cievy a spôsobí jej rýchlu trombózu.

Metóda je nízko traumatická, vyhýba sa veľkému chirurgickému zákroku, ale indikácie na to sú obmedzené. Okrem toho je potrebné špeciálne vybavenie a kvalifikovaní zamestnanci.

Špeciálne metódy boja proti krvácaniu.

K mechanickým metódam zástavy krvácania patria určité typy operácií: splenektómia pri krvácaní parenchýmu zo sleziny, resekcia žalúdka pri krvácaní z vredu alebo nádoru, lobektómia pri krvácaní do pľúc atď.

Jednou zo špeciálnych mechanických metód je použitie obturátorovej sondy pri krvácaní z kŕčových žíl pažeráka – pomerne častou komplikáciou ochorení pečene sprevádzaných syndrómom portálnej hypertenzie. Zvyčajne sa používa sonda Blackmore vybavená dvoma manžetami, z ktorých spodná je upevnená v kardii a horná pri nafúknutí stláča krvácajúce žily pažeráka.

Cievna sutúra a cievna rekonštrukcia.

Používa sa v prípade poškodenia veľkých hlavných ciev, zastavenie prietoku krvi, ktoré by viedlo k nepriaznivým následkom pre život pacienta. Rozlišujte medzi ručným a mechanickým švom.

Pri aplikácii ručnej sutúry sa používa atraumatický nevstrebateľný šijací materiál (závity č. 4 / 0-7 / 0, v závislosti od kalibru cievy).

Pri inom charaktere poškodenia cievnej steny sa využívajú rôzne možnosti rekonštrukčného zásahu na cievach: laterálna sutúra, laterálna náplasť, resekcia s end-to-end anastomózou, protetika (výmena cievy), shunting (vytvorenie bypassu pre krv).

Pri rekonštrukcii krvných ciev sa ako protézy a skraty zvyčajne používa autoveina, autoartéria alebo syntetický materiál. Pri takejto cievnej operácii musia byť splnené tieto požiadavky:

Vysoký stupeň tesnosti;

Absencia porúch prietoku krvi (konstrikcie a víry);

Čo najmenej materiálu na šitie v lúmene cievy;

Presné porovnanie vrstiev cievnej steny.

Treba poznamenať, že iba pri tejto metóde je plne zachované prekrvenie tkanív.

Fyzikálne metódy.

Používajú sa len na krvácanie z malých ciev, parenchýmu a kapilár, keďže krvácanie zo žily stredného alebo veľkého kalibru a ešte viac z tepny sa dá zastaviť len mechanicky.

Fyzikálne metódy sa inak nazývajú tepelné, keďže sú založené na použití nízkych alebo vysokých teplôt.

Vplyv nízkej teploty.

Mechanizmom hemostatického účinku hypotermie je vazospazmus, spomalenie prietoku krvi a vaskulárna trombóza.

lokálna hypotermia.

Aby sa zabránilo krvácaniu a tvorbe hematómov v skorom pooperačnom období, na ranu sa umiestni ľadový obklad na 1-2 hodiny. Metódu možno použiť pri krvácaní z nosa (ľadový obklad na chrbtici nosa), žalúdočnom krvácaní (ľadový obklad na epigastrickej oblasti).

Pri žalúdočnom krvácaní je tiež možné zaviesť studené (+4 ° C) roztoky do žalúdka cez hadičku (zvyčajne sa používajú chemické a biologické hemostatické činidlá).

Kryochirurgia.

Kryochirurgia je špeciálna oblasť chirurgie. Používajú sa tu veľmi nízke teploty. Lokálne zmrazenie sa používa pri operáciách mozgu, pečene, pri liečbe cievnych nádorov.

Vystavenie vysokej teplote.

Mechanizmom hemostatického účinku vysokej teploty je koagulácia proteínu cievnej steny, urýchlenie zrážania krvi.

Použitie horúcich roztokov

Metódu je možné aplikovať počas operácie. Napríklad pri difúznom krvácaní z rany, pri parenchymálnom krvácaní z pečene, lôžka žlčníka atď. je kontrolovaná.

Diatermokoagulácia.

Diatermokoagulácia je najbežnejšie používaná fyzikálna metóda na zastavenie krvácania. Metóda je založená na použití vysokofrekvenčných prúdov, vedúcich ku koagulácii a nekróze cievnej steny v mieste kontaktu s hrotom prístroja a vzniku trombu. Bez diatermokoagulácie už nie je mysliteľná ani jedna vážna operácia. Umožňuje rýchlo zastaviť krvácanie z malých ciev bez zanechania ligatúr (cudzie teleso) a tak operovať suchú ranu. Nevýhoda elektrokoagulačnej metódy: pri nadmernej koagulácii dochádza k rozsiahlej nekróze, ktorá môže sťažiť následné hojenie rán.

Metódu je možné použiť pri krvácaní z vnútorných orgánov (koagulácia krvácajúcej cievy v žalúdočnej sliznici cez fibrogastroskop) a pod. Elektrokoaguláciu možno použiť aj na separáciu tkanív so súčasnou koaguláciou malých ciev (nástroj – „elektroknôž“). čo značne uľahčuje množstvo operácií, keďže rez v podstate nesprevádza krvácanie.

Na základe antiblastických úvah je elektronôž široko používaný v onkologickej praxi.

Laserová fotokoagulácia, plazmový skalpel.

Metódy súvisia s novými technológiami v chirurgii. Sú založené na rovnakom princípe ako diatermokoagulácia (vytvorenie lokálnej koagulačnej nekrózy), umožňujú však dávkovanie a šetrnejšie zastavenie krvácania. Toto je obzvlášť dôležité pri krvácaní z parenchýmu.

Chemické metódy.

Podľa spôsobu aplikácie sa všetky chemické metódy delia na lokálne a všeobecné (resp. resorpčné pôsobenie).

Lokálne hemostatické činidlá.

Lokálne hemostatiká sa používajú na zastavenie krvácania v rane, v žalúdku a na iných slizniciach.

Peroxid vodíka. Používa sa pri krvácaní do rany, pôsobí tak, že urýchľuje tvorbu trombu.

Vazokonstriktory (adrenalín). Používajú sa na zabránenie krvácania pri extrakcii zubov, vstrekujú sa do submukóznej vrstvy pri žalúdočnom krvácaní atď.

Inhibítory fibrinolýzy - kyselina ε-aminokaprónová. Zavedené do žalúdka so žalúdočným krvácaním.

Želatínové prípravky (gelaspon). Sú to špongie vyrobené z penovej želatíny. Urýchľujú hemostázu, pretože pri kontakte so želatínou dochádza k poškodeniu krvných doštičiek a k uvoľneniu faktorov, ktoré urýchľujú tvorbu krvnej zrazeniny. Okrem toho majú tlmiaci účinok. Používa sa na zastavenie krvácania na operačnej sále alebo pri náhodnej rane.

Vosk. Využíva sa jeho upchávkový efekt. Poškodené ploché kosti lebky sú pokryté voskom (najmä pri operácii trepanácie lebky).

Karbazochróm. Používa sa pri kapilárnom a parenchymálnom krvácaní. Znižuje vaskulárnu permeabilitu, normalizuje mikrocirkuláciu. Na povrch rany sa aplikujú utierky navlhčené roztokom.

Kaprofer. Používa sa na výplach žalúdočnej sliznice pri krvácaní z erózií akútnych vredov (s endoskopiou).

Hemostatické činidlá s resorpčným účinkom

Do tela pacienta sa zavádzajú hemostatické látky s resorpčným účinkom, ktoré spôsobujú zrýchlenie procesu trombózy poškodených ciev.

· Inhibítory fibrinolýzy (kyselina ε-aminokaprónová).

· Chlorid vápenatý - používa sa pri hypokalciémii, ako ióny

· Vápnik je jedným z faktorov systému zrážania krvi.

· Látky, ktoré urýchľujú tvorbu tromboplastínu – dicynón, etamsylát (navyše normalizujú priepustnosť cievnej steny a mikrocirkuláciu).

· Látky so špecifickým účinkom. Napríklad pituitrín na krvácanie z maternice: liek spôsobuje sťahovanie svalov maternice, čím sa zmenšuje priesvit ciev maternice a pomáha tak zastaviť krvácanie.

Metódy konečného zastavenia krvácania sa v závislosti od charakteru použitých metód delia na mechanické, fyzikálne (tepelné) a chemické.

mechanické metódy.

Podviazanie ciev.

Existujú dva typy ligácie ciev:

Bandážovanie cievy v rane;

Ligácia cievy v celom rozsahu.

Podviazanie cievy v rane.

Určite je vhodnejšie obviazať cievu v rane priamo v mieste poranenia. Tento spôsob zastavenia krvácania narúša prívod krvi do minimálneho množstva tkaniva.

Celé podviazanie cievy

Existujú dve indikácie pre ligáciu cievy.

Technika vykonávania v súlade s topografickými a anatomickými údajmi odkryje a podviaže cievu pozdĺž dĺžky proximálne k zóne poškodenia.

Šitie plavidiel.

V prípadoch, keď krvácajúca cieva nevyčnieva nad povrch rany a nie je možné ju zachytiť svorkou, je okolo cievy cez okolité tkanivá aplikovaná taštičková šnúrka alebo steh v tvare písmena Z s následným utiahnutím závit - takzvané šitie ciev

Krútenie, drvenie krvných ciev.

Tamponáda na rany, tlakový obväz.

Embolizácia ciev.

Metóda sa týka endovaskulárnej chirurgie. Používa sa pri krvácaní z vetiev pľúcnych tepien, koncových vetiev brušnej aorty a pod.. V tomto prípade sa podľa Seldingerovej metódy katetrizuje stehenná tepna, katéter sa privedie do miesta krvácania, kontrast sa vstrekne činidlo a po vykonaní röntgenových lúčov sa identifikuje miesto poranenia (diagnostická fáza). Potom sa pozdĺž katétra na miesto poškodenia privedie umelá embólia (špirála, chemická látka: alkohol, polystyrén), ktorá prekryje lúmen cievy a spôsobí jej rýchlu trombózu.

Metóda je nízko traumatická, vyhýba sa veľkému chirurgickému zákroku, ale indikácie na to sú obmedzené. Okrem toho je potrebné špeciálne vybavenie a kvalifikovaní zamestnanci.

Špeciálne metódy boja proti krvácaniu.

Cievna sutúra a cievna rekonštrukcia.

Pri aplikácii ručnej sutúry sa používa atraumatický nevstrebateľný šijací materiál (závity č. 4 / 0-7 / 0, v závislosti od kalibru cievy).

Pri rekonštrukcii krvných ciev sa ako protézy a skraty zvyčajne používa autoveina, autoartéria alebo syntetický materiál. Pri takejto cievnej operácii musia byť splnené tieto požiadavky:

Vysoký stupeň tesnosti;

Absencia porúch prietoku krvi (konstrikcie a víry);

Čo najmenej materiálu na šitie v lúmene cievy;

Presné porovnanie vrstiev cievnej steny.

Treba poznamenať, že iba pri tejto metóde je plne zachované prekrvenie tkanív.

Fyzikálne metódy.

Používajú sa len na krvácanie z malých ciev, parenchýmu a kapilár, keďže krvácanie zo žily stredného alebo veľkého kalibru a ešte viac z tepny sa dá zastaviť len mechanicky.

Fyzikálne metódy sa inak nazývajú tepelné, keďže sú založené na použití nízkych alebo vysokých teplôt.

Vplyv nízkej teploty.

Mechanizmom hemostatického účinku hypotermie je vazospazmus, spomalenie prietoku krvi a vaskulárna trombóza.

lokálna hypotermia.

Aby sa zabránilo krvácaniu a tvorbe hematómov v skorom pooperačnom období, na ranu sa na 1-2 hodiny umiestni ľadový obklad. Metódu možno použiť pri krvácaní z nosa (ľadový mechúr na chrbte nosa), žalúdočnom krvácaní (ľadový mechúr v epigastrickej oblasti).

Pri žalúdočnom krvácaní je tiež možné zaviesť studené (+4 ° C) roztoky do žalúdka cez hadičku (zvyčajne sa používajú chemické a biologické hemostatické činidlá).

Kryochirurgia.

Kryochirurgia je špeciálna oblasť chirurgie. Používajú sa tu veľmi nízke teploty. Lokálne zmrazenie sa používa pri operáciách mozgu, pečene, pri liečbe cievnych nádorov.

Vystavenie vysokej teplote.

Mechanizmom hemostatického účinku vysokej teploty je koagulácia proteínu cievnej steny, urýchlenie zrážania krvi.

Použitie horúcich roztokov

Metódu je možné aplikovať počas operácie. Napríklad pri difúznom krvácaní z rany, pri parenchymálnom krvácaní z pečene, lôžka žlčníka atď. je kontrolovaná.

Diatermokoagulácia.

Metódu je možné použiť pri krvácaní z vnútorných orgánov (koagulácia krvácajúcej cievy v žalúdočnej sliznici cez fibrogastroskop) a pod. Elektrokoaguláciu možno použiť aj na separáciu tkanív so súčasnou koaguláciou malých ciev (nástrojom je „elektrónôž“). , čo značne uľahčuje množstvo operácií, keďže rez v podstate nesprevádza krvácanie.

Na základe antiblastických úvah je elektronôž široko používaný v onkologickej praxi.

Laserová fotokoagulácia, plazmový skalpel.

Chemické metódy.

Podľa spôsobu aplikácie sa všetky chemické metódy delia na lokálne a všeobecné (resp. resorpčné pôsobenie).

Lokálne hemostatické činidlá.

Lokálne hemostatiká sa používajú na zastavenie krvácania v rane, v žalúdku a na iných slizniciach.

Peroxid vodíka. Používa sa pri krvácaní do rany, pôsobí tak, že urýchľuje tvorbu trombu.

Vazokonstriktory (adrenalín). Používajú sa na zabránenie krvácania pri extrakcii zubov, vstrekujú sa do submukóznej vrstvy pri žalúdočnom krvácaní atď.

Inhibítory fibrinolýzy - kyselina ε-aminokaprónová. Zavedené do žalúdka so žalúdočným krvácaním.

Vosk. Využíva sa jeho upchávkový efekt. Poškodené ploché kosti lebky sú pokryté voskom (najmä pri operácii trepanácie lebky).

Karbazochróm. Používa sa pri kapilárnom a parenchymálnom krvácaní. Znižuje vaskulárnu permeabilitu, normalizuje mikrocirkuláciu. Na povrch rany sa aplikujú utierky navlhčené roztokom.

Kaprofer. Používa sa na výplach žalúdočnej sliznice pri krvácaní z erózií akútnych vredov (s endoskopiou).

Hemostatické činidlá s resorpčným účinkom

Do tela pacienta sa zavádzajú hemostatické látky s resorpčným účinkom, ktoré spôsobujú zrýchlenie procesu trombózy poškodených ciev.

Inhibítory fibrinolýzy (kyselina ε-aminokaprónová).

Chlorid vápenatý - používa sa pri hypokalciémii, ako ióny

· Vápnik je jedným z faktorov systému zrážania krvi.

Látky, ktoré urýchľujú tvorbu tromboplastínu – dicynon, etamzilat (navyše normalizujú priepustnosť cievnej steny a mikrocirkuláciu).

Syntetické analógy vitamínu K (Vikasol). Podporovať syntézu protrombínu. Je indikovaný na porušenie funkcií pečene (napríklad s cholemickým krvácaním).

Látky, ktoré normalizujú priepustnosť cievnej steny (kyselina askorbová, rutín, karbazohrom).

História doktríny transfúzie krvi. Imunologické základy transfúzie krvi.

V histórii transfúzie krvi sú štyri hlavné obdobia.

Prvé obdobie: od staroveku do roku 1628.

Druhé obdobie: od roku 1628 do roku 1901.

Tretie obdobie: od roku 1901 do prvej transfúzie krvi, berúc do úvahy skupinovú príslušnosť (Kreil, V.N. Shamov).

Štvrté obdobie: od 1. transfúzie krvi s prihliadnutím na skupinovú príslušnosť až po súčasnosť.

V dávnych dobách sa medzi mnohými národmi rozšírilo liečenie mnohých chorôb požitím krvi. Dominancia takzvaného vampirizmu pokračovala až do stredoveku.

Myšlienka omladenia infúziou krvi do ciev sa neodôvodnila. Známa je skutočnosť, že v roku 1492 došlo k transfúzii krvi pápežovi Inocentovi od dvoch mladých mužov.

V roku 1628 opísal Harvey kruhy krvného obehu a v roku 1667 Denis a Emerets vo Francúzsku transfúzovali krv z jahniatka pacientovi, ale štvrtá transfúzia skončila smrťou pacienta. Mimoriadne zasadnutie súdu rozhodlo o aplikácii akejkoľvek injekcie krvi až po osobitnom povolení lekárskej fakulty parížskej univerzity.

Avšak v roku 1675 Vatikán vydal verdikt zakazujúci transfúziu krvi človeku a práca bola obmedzená na takmer jeden a pol storočia.

V roku 1819 anglický lekár I. Blendel prvýkrát transfúziou krvi z človeka na človeka pomocou špeciálneho prístroja.

Prvú úspešnú transfúziu krvi v Rusku v roku 1832 vykonal G. Wolf. Na rany a stratu krvi použil transfúziu krvi N.I. Pirogov, I.V. Buyalsky, S.P. Kolomnin. V Rusku sa od roku 1832 do konca 19. storočia vykonalo 60 krvných transfúzií, u nás aj v zahraničí však išlo o práce empirického charakteru.

Krvné transfúzie sa stali vedecky podloženými a menej nebezpečnými po tom, čo K. Landsteiner v roku 1901 zistil, že ľudské krvné sérum môže zlepovať (aglutinovať) červené krvinky inej osoby. Tento jav sa nazýva „fenomén izohemaglutinácie“.

Landsteiner opísal tri krvné skupiny a v roku 1907 Jánsky štvrtú krvnú skupinu.

Krvná skupina je určená prítomnosťou skupinovo špecifických antigénov v erytrocytoch - aglutinogénov: A, B a O a v sére - protilátok: α a β. Aglutinogény sú polypeptidy, ktoré sa objavujú v 3. mesiaci vývoja plodu. Sérové aglutiníny sa nachádzajú v globulínových frakciách a ich maximálny titer je vo veku od 5 do 20 rokov.

Reakcia lepenia erytrocytov nastáva v tých prípadoch, keď dôjde k stretnutiu aglutinogénov a aglutinínov s rovnakým názvom: A a α, B a β. Okrem toho sú erytrocyty darcovskej krvi aglutinované.

Podľa klasifikácie K. Landsteinera a J. Jánskeho sa v súčasnosti rozlišujú tieto krvné skupiny:

Skupina I - O (I) αβ - v erytrocytoch nie sú žiadne aglutinogény A a B, existuje aglutinogén O, ale keďže proti nemu neexistujú protilátky, nemá to praktický význam. V plazme, sére majú títo jedinci α a β aglutiníny.

Skupina II - A (II) β - v erytrocytoch je aglutinogén A, v sére - aglutinín β.

Skupina III - B (III) α - aglutinogén B v erytrocytoch, aglutinín α v sére.

Skupina IV - AB (IV) o - v erytrocytoch sú aglutinogény A a B, v sére nie sú žiadne aglutiníny.

Krvná skupina sa počas života človeka nemení.

Na základe objavu K. Landsteinera v roku 1907. G. Krail vykonal prvú transfúziu krvi s prihliadnutím na skupinovú príslušnosť. V roku 1919 prvú transfúziu krvi v Rusku, berúc do úvahy skupinovú príslušnosť, vykonal V.N. Šamov.

Citrát sodný, ktorý v roku 1914 navrhli V.A. Yurevich a N.K. Rozengart na prevenciu zrážania krvi, umožnil začať výskum jeho konzervácie. V roku 1934 brilantní domáci vedci A.N. Filatov a N.G. Kartashevsky prvýkrát na svete rozdelili darcovskú krv na frakcie, čím položili základ pre výrobu komponentov a krvných produktov a určili nový, moderný smer v transfuziológii - tzv. použitie jednotlivých zložiek a krvných frakcií.

V roku 1940 Landsteiner a Wiener objavili ďalší antigén obsiahnutý v ľudských erytrocytoch a označili ho Rh (faktor rhesus).

Faktor Rhesus, ako sa ukázalo, je nerovnomerne rozdelený medzi predstaviteľov jednotlivých rás. V európskej populácii je tento antigén prítomný u 85 % ľudí (Rh-pozitívnych) osôb a u 15 % (Rh-negatívnych osôb) chýba. U osôb mongoloidnej rasy tvoria Rh-negatívne tváre iba 0,5%.

V súčasnosti je známych 6 hlavných odrôd antigénov systému Rh (Rh - Hr), ktoré tvoria polyalelický systém:

Rh(D), rh | (C), rh || (E)

h (d), h | (c), h (e).

Najdôležitejší z nich je Rh antigén, ktorý má najvyššiu imunitnú aktivitu.

Objav Landsteinera a Wienera určil základné požiadavky pre každú transfúziu krvi: transfúziu, pričom sa brala do úvahy kompatibilita pre antigény AB0 a Rh.

Skupinové systémy erytrocytov. Skupinový systém AB0 a skupinový systém Rhesus. Metódy určovania krvných skupín podľa systémov AB0 a Rhesus.

V závislosti od prítomnosti aglutinogénov A a B v erytrocytoch a v sére ich zodpovedajúcich aglutinínov α a β sú všetci ľudia rozdelení do štyroch skupín:

Skupina O (I) - v erytrocytoch nie sú žiadne aglutinogény, v sére sú aglutiníny α a β.

Skupina A (II) - aglutinogén A v erytrocytoch, aglutinín β v sére.

Skupina B (III) - aglutinogén B v erytrocytoch, aglutinín α v sére.

Skupina AB (IV) - v erytrocytoch aglutinogény A a B, v sére nie sú žiadne aglutiníny.

Nedávno boli v systéme AB0 nájdené odrody klasických antigénov A a B, ako aj iné antigény.

Stanovenie krvnej skupiny je založené na reakcii priamej hemaglutinácie pri izbovej teplote, ktorá vzniká pri stretnutí aglutinínu a aglutinogénov rovnakého mena.

Na určenie krvnej skupiny podľa systému AB0 existujú 3 spôsoby:

1. s použitím štandardných sér obsahujúcich prirodzené aglutiníny v dostatočnom titri, umožňujúce určiť, ktoré aglutinogény sú obsiahnuté v erytrocytoch testovanej krvi;

2. s použitím hybridómových preparátov s obsahom imunitných protilátok anti-A, anti-B a anti-AB, ktoré zároveň umožňujú detekovať aglutinogény A a B v erytrocytoch testovanej krvi;

3. použitím štandardných sér a štandardných erytrocytov (krížová metóda). V tomto prípade sa súčasne stanovujú aglutinogény aj krvné aglutiníny, čo umožňuje poskytnúť najkompletnejšiu skupinovú charakterizáciu testovanej krvi.

Pri použití prvej a tretej metódy sa odoberú 2 série sér (kontrolné sérum), aby sa predišlo chybným výsledkom.

Stanovenie krvnej skupiny pomocou štandardných sér.

Na tanierik, tanierik, tabletu s bielym zmáčateľným povrchom pod označeniami prvých 3 krvných skupín napísaných sklárom, sa aplikujú veľké kvapky štandardných hemaglutinačných sér prvých 3 skupín v 2 sériách. Každé sérum sa odoberá samostatnou pipetou. Celkovo sa tak získa 6 kvapiek séra (3 kvapky v 2 radoch).

Vedľa kvapiek séra sa umiestni malá kvapka testovanej krvi (kvapka krvi by mala byť 5-10 krát menšia ako kvapka séra).

Čistou, suchou sklenenou tyčinkou sa kvapky krvi zmiešajú so sérom, aby sa zmes rovnomerne sfarbila do červena. Pre každú kvapku sa používa samostatná sklenená tyčinka. Na miešanie môžete použiť aj rohy podložného skla.

Po zmiešaní kvapiek sa platňa pretrepáva 2-3 minúty, potom sa nechá 2 minúty. v pokoji a znovu pretrepte, pričom sa pozoruje priebeh reakcie. Reakčný čas musí byť aspoň 5 minút.

Po 3 minútach po kvapkách pridajte malú kvapku izotonického roztoku chloridu sodného za pomalého kývania platničky (doštičky, tablety).

Berte do úvahy výsledky získané po 5 minútach.

Interpretácia výsledkov.

Hemaglutinačná reakcia môže byť pozitívna alebo negatívna.

Pri pozitívnej reakcii sa po zmiešaní testovanej krvi so sérom vytvoria malé vločky aglutinátov, ktoré vzájomným splynutím vytvárajú veľké vločky viditeľné voľným okom. V tomto prípade sa sérum stane bezfarebným alebo takmer bezfarebným.

V prípade negatívnej reakcie zostáva zmes séra a krvi rovnomerne sfarbená do červena počas celej doby pozorovania a nie sú v nej detekované aglutináty.

Predpokladom pre správnu interpretáciu štúdie je zhoda výsledkov reakcie so sérami rovnakej skupiny rôznych sérií.

Pri vykonávaní opísanej štúdie sú možné 4 kombinácie pozitívnych a negatívnych výsledkov:

Vo všetkých kvapkách je zmes erytrocytov testovanej krvi a štandardných sér sfarbená do jednotnej červenej farby a nikde nie je zistená aglutinácia, t.j. aglutinačná reakcia je negatívna vo všetkých 6 kvapkách. To svedčí o absencii aglutinogénov α a β v erytrocytoch testovanej krvi, t.j. - o jeho príslušnosti k skupine O (I).

Ak sa aglutinačná reakcia rozvinula pri zmiešaní testovanej krvi so sérami skupín O (I) a B (III), znamená to, že erytrocyty testovanej krvi obsahujú aglutinogén α, t.j. patrí do skupiny A (II).

V prípadoch aglutinácie erytrocytov testovanej krvi so štandardnými sérami skupín O (I) a A (II) možno tvrdiť, že na membráne erytrocytov je prítomný aglutinogén β, t.j. krv patrí do skupiny B (III).

Ak sa aglutinácia vyskytla vo všetkých kvapkách, môže to naznačovať prítomnosť α a β aglutinogénov v erytrocytoch testovanej krvi, čo však možno potvrdiť iba vylúčením nešpecifickej aglutinácie, pre ktorú sa v takýchto prípadoch vykonáva povinná kontrolná štúdia so skupinou IV sérum. Ak sa súčasne nevyvinie aglutinačná reakcia, je bezpečné odmietnuť nešpecifickú aglutináciu v predchádzajúcom experimente a poslať testovanú krv do skupiny AB (IV).

Stanovenie krvnej skupiny pomocou tsoliklonov.

Použitie koliklonov, ako aj použitie polyklonálnych sér umožňuje určiť zoskupenie krvi podľa systému AB0, z dôvodu detekcie aglutinogénov erytrocytov v priamej hemaglutinačnej reakcii.

Soliklony anti-A, anti-B a anti-AB sú monoklonálne protilátky triedy M produkované myšacími hybridómami.

1) Veľké kvapky anti-A, anti-B a anti-AB tsoliclonov sa nanášajú do lietadla samostatnými pipetami pod príslušnými nápismi.

2) Vedľa kvapiek činidiel sa aplikujú 10-krát menšie kvapky testovanej krvi (jedna kvapka krvi vedľa každej kvapky činidla).

3) Krv sa zmieša s činidlami pomocou samostatných sklenených tyčiniek.

4) Doska alebo tableta sa kýva 3 minúty.

5) Berte do úvahy reakciu.

Interpretácia výsledkov.

Pre výsledky štúdie je možné získať 4 možnosti:

1) Ak sa aglutinačná reakcia nevyvinula pri anti-A, anti-B a anti-AB koliklonoch, potom by sa testovaná krv mala zaradiť do skupiny 0 (I), pretože jej erytrocyty neobsahujú aglutinogény A a B.

2) Ak sa po zmiešaní kvapky testovanej krvi s činidlami anti-A a anti-AB zaznamená aglutinačná reakcia, znamená to, že erytrocyty obsahujú aglutinogén A a testovanú krv treba zaradiť do skupiny A (II). Zároveň nedochádza k aglutinácii s anti-B koliklonom.

3) Ak sa pozoruje aglutinačná reakcia s anti-B a anti-AB koliklonmi, ale chýba pri anti-A koliklone, skúmaná krv patrí do skupiny B (III), pretože jej erytrocyty obsahujú aglutinogén B.

4) Ak sa pozoruje pozitívna aglutinačná reakcia vo všetkých 3 kvapkách, kde sú reagencie zmiešané s kvapkami testovanej krvi, erytrocyty testovanej krvi obsahujú aglutinogény A a B, čo znamená, že krv patrí do skupiny AB (IV) skupina. Ale pre rozumné vyjadrenie tejto skutočnosti je potrebné vylúčiť spontánnu nešpecifickú reakciu. Za týmto účelom zmiešajte v lietadle kvapku testovanej krvi s kvapkou izotonického roztoku chloridu sodného. V neprítomnosti aglutinácie v kontrolnej štúdii možno študovanú krv s istotou zaradiť do skupiny AB (IV).

Určenie skupinovej príslušnosti krvi krížovým spôsobom.

Táto metóda stanovenia krvnej skupiny zahŕňa súčasné stanovenie aglutinogénov v erytrocytoch skúmanej krvi a aglutinínov obsiahnutých v jej plazme alebo sére. Ako diagnostika sa používajú štandardné hamaglutinačné séra a štandardné erytrocyty so známou skupinovou príslušnosťou.

1) Veľké kvapky štandardných hemaglutinačných sér prvých 3 skupín sa aplikujú pod vopred vytvorené značky na doštičku s bielym zmáčateľným povrchom v dvoch sériách. Sérové kvapky by mali mať objem najmenej 0,1 ml. Takto sa získa 6 kvapiek usporiadaných v 2 radoch.

2) Na spodnú časť platničky sa aplikujú malé kvapky (0,01 ml) suspenzie štandardných erytrocytov prvých 3 skupín, tiež pod príslušným označením.

3) Zo skúmavky obsahujúcej odstredenú testovanú krv sa sérum (plazma) odoberie pipetou a veľké kvapky plazmy (séra) s objemom 0,1 ml sa zmiešajú so štandardnými erytrocytmi.

Tými istými pipetami sa malé (0,01 ml) kvapky sedimentu erytrocytov z testovanej krvi aplikujú vedľa kvapiek štandardného hemaglutinačného séra.

4) Kvapky, v ktorých sa zmiešajú erytrocyty testovanej krvi so štandardnými sérami a plazma testovanej krvi so štandardnými erytrocytmi, sa zmiešajú samostatnými sklenenými tyčinkami, doštička sa pretrepe, potom sa nechá 1-2 minúty osamote a znova sa pretrepe. Vyvíjajúcu sa reakciu pozorujte aspoň 5 minút.

5) Po 3 minútach pridajte ku všetkým kvapkám kvapku fyziologického roztoku, znovu pretrepte platňu pre lepšie premiešanie činidiel a vezmite do úvahy výsledky po 5 minútach.

Interpretácia výsledkov.

Interpretácia výsledkov zahŕňa porovnanie výsledkov interakcie štandardných erytrocytov s plazmou testovanej krvi a štandardných hemaglutinačných sér s erytrocytmi krvi, ktorých skupinovú príslušnosť je potrebné zistiť. Možné sú 4 kombinácie:

1) Pri interakcii so štandardnými erytrocytovými sérami testovanej krvi sa v žiadnej vzorke nevyvinula aglutinácia. To naznačuje neprítomnosť aglutinogénov A a B v erytrocytoch. Pri zmiešaní štandardných erytrocytov s plazmou testovanej krvi nedochádza k aglutinácii len s erytrocytmi skupiny 0 (I), ale s erytrocytmi skupiny A (II) resp. B (III) skupiny. Ten potvrdzuje, že testovaná krv patrí do skupiny 0(I), od r indikuje prítomnosť alfa a beta aglutinínov v jej sére.

2) Keď erytrocyty testovanej krvi interagovali so štandardnými sérami, došlo k aglutinácii so sérami skupín 0 (I) a B (III) v neprítomnosti imunitnej aglutinácie erytrocytov v kvapke séra skupiny A (II). To indikuje prítomnosť aglutinogénu A v erytrocytoch testovanej krvi.Sérum (plazma) testovanej krvi poskytuje aglutináciu so štandardnými erytrocytmi skupiny B (III), ale nie s 0 (I) a A (II) erytrocytmi. To potvrdzuje, že testovaná krv patrí do skupiny A(II), od r indikuje prítomnosť aglutinínu beta v sére.

3) Pri pozitívnej aglutinačnej reakcii so štandardnými sérami skupín 0 (I) a A (II) sa zisťuje prítomnosť aglutinogénu B v erytrocytoch testovanej krvi, t.j. potvrdzuje sa jej príslušnosť k skupine B(III). Pri zmiešaní séra (plazmy) testovanej krvi so štandardnými erytrocytmi sa aglutinačná reakcia ukáže ako negatívna s erytrocytmi skupiny 0 (I) a B (III), ale pozitívna s erytrocytmi skupiny A (II). Zisťuje sa teda prítomnosť aglutinínu alfa v sére testovanej krvi, čo potvrdzuje, že testovaná krv patrí do skupiny B (III).

4) Pri zmiešaní erytrocytov testovanej krvi so štandardnými sérami sa dosiahne aglutinačná reakcia vo všetkých 6 kvapkách, kde boli študované erytrocyty zmiešané so sérami prvých 3 skupín v 2 sériách. V kontrolnej štúdii so sérom skupiny AB (IV) sa aglutinačná reakcia ukáže ako negatívna, čo nám umožňuje hovoriť o príslušnosti testovanej krvi do skupiny AB (IV). Štúdium výsledkov interakcie séra (plazmy) testovanej krvi so štandardnými erytrocytmi vo všetkých prípadoch ukáže neprítomnosť aglutinácie, čo naznačuje neprítomnosť prirodzených aglutinínov proti aglutinogénom A a B v plazme testovanej krvi. , t.j. potvrdiť svoju príslušnosť ku skupine AB (IV).

Stanovenie Rh-príslušnosti krvi

V súčasnosti existuje niekoľko spôsobov, ako určiť Rh krvnú príslušnosť (konštatovanie prítomnosti alebo neprítomnosti antigénu Rh 0 D v erytrocytoch. Treba si uvedomiť, že najväčšiu úlohu v transfuziológii zohráva Rh faktor D (Rh 0 D), takže tzv. bežne používané testy na Rh príslušnosť identifikujú tento typ Rh antigénu.

Určenie príslušnosti Rh pomocou anti-D-Super tsoliklonu.

Aktívnou zložkou tohto lieku sú monoklonálne celkové anti-Rhesus protilátky patriace do triedy Ig M.

1. Určenie Rh-príslušnosti na rovine.

Naneste 1 kvapku Zoliclone Anti-D-Cynep na zmáčateľný povrch.

Neďaleko sa umiestni 5-10 krát menšia kvapka testovanej krvi alebo suspenzie erytrocytov.

Krv (suspenzia erytrocytov) sa zmieša s činidlom.

Po 20-30 sekundách po premiešaní sa platňa jemne pretrepáva 3 minúty.

Zvážte výsledky kontrolou voľným okom.

Interpretácia výsledkov.

Výskyt aglutinácie pri zmiešaní testovanej krvi s činidlom naznačuje, že krvné erytrocyty obsahujú antigén Rh 0 D, t.j. sú Rh pozitívne. Pri absencii aglutinácie sa testovaná krv považuje za Rh negatívnu.

Stanovenie Rh faktora Rh 0 (D) konglutinačnou reakciou s použitím želatíny.

Do 2 skúmaviek pridajte 1 kvapku suspenzie študovaných erytrocytov a 2 kvapky 10% roztoku želatíny zahriateho na 46-48 stupňov na skvapalnenie.

Do jednej zo skúmaviek pridajte 2 kvapky skupinovo špecifického (t. j. patriace do rovnakej skupiny ABO ako študované erytrocyty) ľudského séra proti Rhesus. Sérum sa nepridáva do inej skúmavky (slúži na kontrolu špecificity aglutinácie)

Paralelne sa rovnakým spôsobom vyšetrujú štandardné Rh-pozitívne a Rh-negatívne erytrocyty v oddelených označených skúmavkách (zmiešajú sa s anti-Rh sérom a roztokom želatíny, ako je opísané v predchádzajúcich odsekoch).

Obsah skúmaviek sa premieša a skúmavky sa umiestnia na 15 minút do vodného kúpeľa s teplotou 46-48 stupňov alebo na 30 minút do termostatu pri rovnakej teplote.

Po určenom čase sa skúmavky vyberú z termostatu (vodného kúpeľa) a do každej sa pridá 5-8 ml fyziologického roztoku, s ktorým sa obsah skúmaviek dôkladne premieša.

Vyhodnoťte výsledky prezeraním trubíc v prechádzajúcom svetle voľným okom alebo cez lupu s 2- až 5-násobným zväčšením.

Interpretácia výsledkov.

S pozitívnym výsledkom (študované erytrocyty sú Rh-pozitívne a spôsobujú aglutináciu s anti-Rh sérom) sú aglutináty jasne viditeľné na pozadí takmer sfarbenej kvapaliny. Ak je výsledok negatívny, kvapalina v skúmavke so suspenziou testovaných erytrocytov je sfarbená do jednotnej červenej alebo ružovej farby, aglutinátové vločky sa nezistia. Výsledok sa berie do úvahy ako pravdivý v prítomnosti aglutinácie v paralelnom experimente so štandardnými Rh-pozitívnymi erytrocytmi a v neprítomnosti aglutinácie v experimente so štandardnými Rh-negatívnymi erytrocytmi, ako aj v skúmavke obsahujúcej len študované erytrocyty a želatína (kontrola špecifickosti reakcie).

Pozitívny výsledok naznačuje, že erytrocyty testovanej krvi obsahujú Rh antigén (t.j. sú Rh-pozitívne) a negatívny výsledok naznačuje, že skúmané erytrocyty neobsahujú Rh antigén, t.j. sú Rh negatívne.

Doplnenie. Na výskum sa môže použiť natívna krv aj zmiešaná s konzervačnou látkou, ale v druhom prípade sa konzervačná látka musí premyť desaťnásobným objemom izotonického roztoku chloridu sodného. Okrem toho by sa v každom prípade určenia Rh príslušnosti touto metódou mali použiť skupinovo špecifické anti-Rh séra 2 sérií (kontrolné sérum).

Stanovenie Rh príslušnosti pomocou univerzálneho anti-Rhesus činidla Rh 0 (D).

Univerzálne anti-Rhesus činidlo je ľudské sérum obsahujúce anti-Rhesus protilátky, ale bez alfa a beta protilátok, a preto ho možno použiť na stanovenie Rh krvi patriacej do ktorejkoľvek skupiny ABO systému. Aby sa zabezpečil priebeh reakcie, pridá sa k nej 33% roztok polyglucínu alebo 20% roztok albumínu.

Vložte 1 kvapku testovanej krvi alebo suspenzie erytrocytov do kónickej skúmavky.

Pridajte 2 kvapky univerzálneho anti-Rhesus činidla a zmiešajte s krvou, ktorá sa má testovať.

Skúmavku nakloňte tak, aby sa jej obsah rozprestieral po stenách, a pomaly otáčajte skúmavkou okolo zvislej osi, aby sa dosiahol lepší kontakt medzi erytrocytmi a činidlom počas 5 minút.

Po 5 minútach pridajte 2-3 ml izotonického roztoku chloridu sodného a premiešajte (bez pretrepávania) obsah skúmavky.

Výsledok sa berie do úvahy pri skúmaní obsahu skúmavky v prechádzajúcom svetle voľným okom.

Interpretácia výsledkov.

V prítomnosti aglutinátov a vyčírení tekutiny v skúmavke obsahujú skúmané erytrocyty antigén Rh 0 (D) a testovaná krv je Rh pozitívna. Pri absencii aglutinátov a ružovej farbe kvapaliny, ktorá pri pretrepaní skúmavky dáva perleťový odtieň, je testovaná krv Rh negatívna.

Význam a metódy na určenie individuálnej kompatibility (AB0) a Rh kompatibility. biologická kompatibilita. Zodpovednosti lekára pre transfúziu krvi.

Testy na individuálnu kompatibilitu krvi darcu a príjemcu.

Pri vykonávaní testov na individuálnu kompatibilitu sa zisťuje, či sa v plazme (sére) príjemcu nachádzajú protilátky namierené proti erytrocytom darcu, schopné spôsobiť aglutináciu erytrocytov v cievnom riečisku príjemcu s následnou ich hemolýzou. Keďže protilátky obsiahnuté v plazme darcovskej krvi sú pri transfúzii riedené výrazne väčším objemom krvi príjemcu s poklesom ich titra, reverzný vzťah (t.j. darcovské protilátky k antigénom erytrocytov príjemcu) v transfuziológii nemá klinický význam. .

Test na kompatibilitu krvi darcu a príjemcu v lietadle pri izbovej teplote.

Veľká kvapka (2-3 kvapky odobraté pipetou) séra alebo plazmy príjemcu sa nanesie na bielu platňu so zmáčateľným povrchom.

Do nej sa pridá 10-krát menšia kvapka darcovskej krvi.

Krv darcu sa zmieša s plazmou (sérom) príjemcu a doštička sa pretrepáva 1-2 minúty. Potom nechajte 1-2 minúty v pokoji.

5 minút po začiatku reakcie (po zmiešaní kvapiek krvi a plazmy) sa reakcia zohľadní po pridaní kvapky fyziologického roztoku do zmesi činidiel (krv a plazma).

Interpretácia výsledkov.

Platnička simuluje, čo sa môže diať v cievnom riečisku príjemcu. Ak sa vytvoria vločky aglutinátov a zmes krvi darcu a plazmy (séra) príjemcu sa zosvetlí, potom krv tohto darcu nemôže byť tomuto príjemcovi podaná, pretože plazma príjemcu obsahuje protilátky proti antigénom erytrocytov krvi darcu. Ak zmes krvi a plazmy zostane červená a aglutináty sa nezistia, znamená to neprítomnosť kompletných protilátok v plazme príjemcu, ktoré môžu spôsobiť imunitnú aglutináciu erytrocytov darcovskej krvi. Preto je možné takúto krv podať transfúziou konkrétnemu darcovi, ktorého plazmu sme manipulovali.

Test na kompatibilitu krvi darcu a príjemcu s 33% roztokom polyglucínu (test na Rh kompatibilitu).

Veľká kvapka plazmy (séra) príjemcu (2-4 kvapky odobraté pipetou) sa umiestni do skúmavky.

Pridajte malú kvapku darcovskej krvi (pomer krvi a plazmy 1:10)

K výslednej zmesi činidiel sa pridá kvapka 33 % roztoku polyglucínu.

Obsah skúmavky sa dôkladne premieša, skúmavka sa nakloní tak, aby sa obsah rozprestieral po jej stenách, a pomaly sa otáča okolo zvislej osi počas 5 minút, čím sa zabezpečí čo najúplnejší vzájomný kontakt prvkov obsahu skúmavky. .

Po 5 minútach sa do skúmavky pridajú 3-4 ml izotonického roztoku chloridu sodného a obsah sa premieša bez trepania.

Výsledky sa berú do úvahy skúmaním obsahu skúmavky voľným okom alebo pod lupou s 2-5-násobným zvýšením.

Interpretácia výsledkov.

S výskytom vločiek aglutinátov a vyčírením tekutiny v skúmavke je krv darcu nezlučiteľná s krvou tohto príjemcu. Ak je kvapalina v skúmavke rovnomerne sfarbená do červena a aglutináty sa nedetegujú, možno konštatovať, že plazma príjemcu nemá neúplné protilátky proti antigénom erytrocytov darcu, a preto je možné krv tohto darcu podať transfúziou. tomuto príjemcovi.

Test kompatibility s použitím 10 % roztoku želatíny (test kompatibility Rhesus).

1 kvapka premytých darcovských erytrocytov sa umiestni do skúmavky.

K erytrocytom darcu sa pridajú 2 kvapky zohriateho 10% roztoku želatíny a 2 kvapky séra príjemcu.

Dôkladne premiešajte obsah skúmavky.

Skúmavku umiestnite na 10 minút do vodného kúpeľa s teplotou 46-48 stupňov.

Po stanovenom čase sa do skúmavky pridá 5-8 ml izotonického roztoku chloridu sodného a obsah skúmavky sa premiešava prevracaním (bez pretrepávania).

Berte do úvahy výsledky voľným okom alebo pod lupou s 2-5-násobným zvýšením.

Interpretácia výsledkov.

Ak je reakcia pozitívna, t.j. je zaznamenaný výskyt aglutinátov na pozadí sfarbenej kvapaliny - táto darcovská krv nemôže byť transfúzovaná tomuto príjemcovi. Ak je kvapalina v skúmavke rovnomerne sfarbená a nedetegujú sa vločky aglutinátov, potom je krv darcu kompatibilná s krvou príjemcu a môže sa mu podať transfúziou.

Nepriamy Coombsov test.

Pri tomto teste (veľmi vysoko citlivý) sa darcovské erytrocyty premyjú 8-10-násobným objemom izotonického fyziologického roztoku, potom sa odstredia a erytrocyty zo sedimentu sa použijú v reakcii, t.j. erytrocyty by sa mali čo najviac zbaviť prítomnosti iných bunkových elementov a plazmy.

Jedna malá kvapka (0,01 ml) premytých darcovských erytrocytov sa umiestni do skúmavky.

Pridajte 3 kvapky séra príjemcu a dôkladne premiešajte obsah skúmavky.

Skúmavka sa umiestni do termostatu pri teplote 37 stupňov na 45 minút.

Po stanovenej dobe inkubácie sa do skúmavky naleje 8-10-násobok objemu izotonického soľného roztoku (chloridu sodného) a obsah skúmavky sa premieša.

Odstreďujte skúmavku, kým sa erytrocyty neusadia.

Premývací postup sa opakuje 3-4 krát, pričom vždy sa opatrne odstráni supernatant.

K premytým erytrocytom sa pridá 4-5 kvapiek izotonického roztoku chloridu sodného, čím sa získa suspenzia erytrocytov.

Jedna kvapka suspenzie erytrocytov sa umiestni na doštičku s bielym zmáčateľným povrchom.

Do suspenzie erytrocytov na rovine sa pridajú 1-2 kvapky antiglobulínového séra a premiešajú sa sklenenou tyčinkou.

Platňa sa periodicky 10 minút pretrepáva.

Výsledok berte do úvahy voľným okom alebo pod lupou s 2-5-násobným zvýšením.

Interpretácia výsledkov.

Ak po pridaní antiglobulínového séra do darcovských erytrocytov inkubovaných so sérom príjemcu vzniknú aglutináty s vyčírením tekutiny, krv príjemcu obsahuje neúplné protilátky proti Rh antigénu alebo iným izoantigénom erytrocytov darcu, a preto táto darcovská krv nemôže takémuto príjemcovi podať transfúziu. Ak nedôjde k aglutinácii, potom je krv tohto darcu kompatibilná s krvou tohto príjemcu, a preto mu môže byť podaná transfúziou.

Chyby pri testovaní skupinovej, Rh-príslušnosti a individuálnej kompatibility.

Vo väčšine prípadov sú chyby a ťažkosti pri vykonávaní imunosérologických štúdií spojené s porušením techniky ich konania. Menej často sa ako dôvody pre chybné závery môžu stretnúť jednotlivé charakteristiky skúmanej krvi.

Vo všetkých prípadoch pochybných výsledkov je potrebné zopakovať štúdiu s použitím činidiel iných sérií, prísne dodržiavať pravidlá na vykonanie vzorky. Ak sa opakovane získajú pochybné výsledky, vzorka krvi by sa mala poslať na analýzu do špecializovaného laboratória.

Najtypickejšie príčiny chýb a ťažkostí pri vykonávaní imunoserologických štúdií.

Použitie činidiel nízkej kvality (expirované, zakalené, čiastočne vysušené atď.)

Porušenie teplotných režimov reakcií. Pri určovaní zoskupenia krvi podľa systému ABO by sa teplota okolia mala pohybovať v rozmedzí od 15 do 25 stupňov Celzia. Pri nižších teplotách sa môže vyvinúť nešpecifická aglutinácia v dôsledku studených aglutinínov a pri vysokých teplotách alfa a beta aglutiníny znižujú svoju aktivitu.

Porušenie správnych pomerov reagujúcich médií. Pri vykonávaní testu so sérami (v prípadoch určenia skupinovej príslušnosti podľa systému ABO) by mal byť pomer objemov krvi a séra 1:10 a pri použití monoklonálnych protilátok a vzoriek s koloidmi (pri určovaní Rh príslušnosti) - 2 -3:10. V opačnom prípade môže aglutinácia zostať nepovšimnutá (v dôsledku skríningu aglutinátov neaglutinovanými erytrocytmi alebo v dôsledku malého množstva aglutinátov).

· Porušenie dočasných režimov odberu vzoriek. Nástup aglutinácie (najmä pri testovaní s monoklonálnymi protilátkami) je badateľný už v prvých sekundách od okamihu premiešania reagujúcich médií, treba však počítať s reakciou v presne stanovenom čase, pretože niekedy existujú odrody antigénov, ktoré majú slabú aglutinovateľnosť a spôsobujú neskorú reakciu (odrody aglutinogénu A, menej často - B).

Ignorovanie potreby kontrolných štúdií (napríklad so sérovou AB (IV) skupinou pri určovaní členstva v skupine so štandardnými heaglutinačnými sérami alebo vzorkami s koloidmi pri určovaní príslušnosti k Rh).

Zvýšená aglutinabilita erytrocytov – možno pozorovať pri ťažkých hnisavých ochoreniach, popáleninách, cirhóze pečene, autoimunitných a hematologických ochoreniach.

Znížená aglutinabilita erytrocytov – často sa vyskytuje pri leukémii.

Krvný chimérizmus je veľmi zriedkavý jav, ktorý sa vyskytuje u dvojčiat, pri transplantácii darcovskej kostnej drene alebo po transfúziách (nútených) inej skupinovej, ale kompatibilnej krvi vo veľkých objemoch.

Prevencia chybných výsledkov výskumu spočíva v dôslednom dodržiavaní existujúcich pravidiel určovania skupinovej a Rh príslušnosti, testov kompatibility s povinným zohľadnením charakteru ochorenia a celkového stavu príjemcu.

biologický test.

Biologický test je povinný pre transfúzie darcovskej krvi, médií s obsahom erytrocytov, plazmy, koncentrátov leukocytov, bez ohľadu na objem a rýchlosť transfúzie krvi.

Biologický test sa vykonáva bezprostredne pred transfúziou a spočíva v 3-násobnej transfúzii 10 – 15 ml transfúzneho média prúdom alebo maximálnou rýchlosťou (2 – 3 ml za minútu) v intervaloch 5 minút, počas ktorých fyziologické roztoky sa podávajú infúziou, aby sa zabránilo trombóze ihly. Ak sa počas biologického testu objaví aspoň jeden zo symptómov, ktoré poukazujú na inkompatibilitu transfúzneho média, jeho transfúzia sa zastaví a prijmú sa príslušné opatrenia. Medzi tieto príznaky patrí zimnica, bolesť v krížoch a podbrušku, pocit zvierania a bolesti na hrudníku, nevoľnosť, vracanie, tachykardia a pokles krvného tlaku. Počas operácie v celkovej anestézii môžu byť príznakmi inkompatibility zvýšené krvácanie tkaniva, zníženie krvného tlaku, zvýšená tachykardia, vylučovanie červeného alebo hnedého moču (v prípadoch katetrizácie močového mechúra).

Krvná transfúzia. Indikácie a kontraindikácie pre transfúziu krvi. Moderné pravidlá transfúzie krvi podľa skupín systému AB0 a systému Rhesus. Metódy a techniky transfúzie krvi.

Indikácie pre transfúziu krvi boli určené známymi mechanizmami jej účinku:

· Náhradné.

Hemostatický.

Imunostimulačný.

· Detoxikácia.

Používa sa na parenterálnu výživu.

Ako však ukazujú skúsenosti, takéto rozšírené používanie krvných transfúzií nebolo vždy účinné, navyše sa často ukázalo ako nebezpečné: okrem červených krviniek dostával pacient aj neživotaschopné leukocyty, krvné doštičky, proteíny, antigény a protilátky s krvou.

Opakované krvné transfúzie viedli k aloimunizácii pacientov.

V súčasnosti je hlavnou indikáciou pre transfúziu krvi akútna masívna strata krvi minimálne 25-30 % BCC s poklesom hemoglobínu pod 70-80 g/l, hematokritom pod 25 % a výskytom porúch prekrvenia.

Okrem toho je transfúzia krvi indikovaná pri šokových a terminálnych stavoch, v ojedinelých prípadoch pri výmenných transfúziách pri hemolytickom ochorení novorodenca a pri operáciách sprevádzaných masívnou stratou krvi.

Vo všetkých ostatných prípadoch sa majú použiť krvné frakcie alebo krvné náhrady.

Kontraindikácie pre transfúziu krvi.

Neexistujú žiadne absolútne kontraindikácie pre transfúziu.

Relatívne kontraindikácie:

Akútna cerebrovaskulárna príhoda.

Obehová nedostatočnosť II st. - III čl.

· Hypertenzia III čl.

· Hepatálna a renálna insuficiencia.

Aktívna (diseminovaná) pľúcna tuberkulóza.

Ťažká bronchiálna astma.

· Alergické ochorenia.

Pravidlá pre transfúziu krvi.

V súčasnosti je transfúzia krvi a jej zložiek povolená len pre skupinu s rovnakým názvom a Rh - príslušenstvo.

Vo výnimočných prípadoch (podľa životne dôležitých indikácií), pri absencii jednoskupinovej krvi alebo jej zložiek, je povolené transfúzia erytromasy O (I) skupiny, Rh - negatívne, ale nie viac ako 500 ml (okrem detí!) .

V neprítomnosti jednoskupinovej plazmy môže byť príjemcovi podaná transfúzia plazmy skupiny AB(IV).

Lekár vykonávajúci transfúziu krvi alebo jej erytromasu musí:

· Pred každou transfúziou zistite krvnú skupinu a Rh - príslušnosť príjemcu.

· Po uistení sa, že darcovská krv je vhodná a po naplnení systému, určiť krvnú skupinu a Rh-príslušnosť darcu, koordinovať sa so štítkom na hemokone.

· Urobte test na individuálnu kompatibilitu krvi príjemcu a darcu.

Test na Rh-kompatibilitu.

· Vykonajte test biokompatibility.

Zvyšok krvi (10 - 15 ml) v hemokone po hemotransfúzii uložíme na 48 hodín do chladničky.

Do 3 hodín po ukončení transfúzie krvi sa pacientovi zmeria teplota, pulz a krvný tlak. Nasledujúce ráno sa vykoná test krvi a moču.

Každá transfúzia krvi, jej frakcií, ako aj krvných náhrad sa zaznamenáva do transfúzneho zoznamu, ktorý je v anamnéze pacienta.

Metódy a techniky transfúzie krvi:

Priama transfúzia. Krv sa podáva transfúziou priamo zo žily darcu do žily príjemcu pomocou prístroja bez použitia konzervačnej látky.

Pre riziko infekcie darcu sa v súčasnosti nepoužíva.

Nepriama transfúzia. Darcovská krv sa uchováva v hemokone alebo ampulke a uchováva sa v chladničke pri t 0 + 4 0 C.

V prípade potreby sa používa na transfúziu bez špeciálneho zahrievania. Nepriama transfúzia krvi a jej frakcií sa používa veľmi široko.

Reinfúzia krvi: transfúzia krvi pacienta naliata do seróznych dutín (brušnej, pleurálnej), pri uzavretom poranení alebo počas operácie. Krv sa odoberá pomocou špeciálneho prístroja alebo ak nie je k dispozícii, v núdzových prípadoch sa prefiltruje cez 8 vrstiev gázy, pridá sa konzervačná látka a okamžite sa intravenózne transfúziou.

Metóda je veľmi efektívna.

Kontraindikácie: poškodenie dutých orgánov, krv v seróznej dutine dlhšie ako 12 hodín, hemolýza krvi.

Autotransfúzia krvi. Používa sa pri elektívnej operácii, kedy sa pacientovi niekoľko dní pred operáciou odoberie zo žily 400-500 ml krvi, pridá sa konzervačná látka, po ktorej sa hemokon uchováva v chladničke a počas operácie pacientovi sa podá transfúzia krvi.

Metóda je veľmi sľubná.

Kontraindikácia: počiatočná anémia u pacienta.

Výmenné transfúzie - čiastočné alebo úplné odstránenie krvi z krvného obehu so súčasnou náhradou rovnakého množstva darcovskej krvi.

Indikácie: hemolytická žltačka novorodencov, hemotransfúzny šok, ťažká otrava. Súčasne sa odoberie krv a súčasne sa podáva infúzia rýchlosťou 1000 ml za 15-20 minút.

Výmenné transfúzie sa používajú zriedka.

Spôsoby podávania krvi:

V súčasnosti sa prevažne používa vnútrožilová transfúzia krvi.

Po testovaní kompatibility sa krv najčastejšie transfúziou do loketnej žily prepichne, menej často cez špeciálnu kanylu zavedenú do žily. V prípade potreby transfúzie veľkých objemov transfúznych médií sa používa permanentný katéter, ktorý sa zavedie do centrálnej žily (zvyčajne do podkľúčovej).

Zvyčajne sa kvapková transfúzia používa rýchlosťou 40 - 60 kvapiek za minútu.

Ak je nevyhnutná urgentná náhrada BCC, možno použiť intravenóznu transfúziu krvi prúdom.

Intraarteriálna injekcia krvi.

Indikácie: šok III-IV štádium, terminálne stavy.

Krv sa vstrekuje do predtým obnaženej periférnej tepny pod tlakom 200 - 220 mm Hg. čl. rýchlosťou 200 ml za 1,5 - 2 minúty. Krv vstreknutá pod tlakom dráždi angioreceptory a zabezpečuje obnovenie koronárneho prietoku krvi.

Intraarteriálna, intrakardiálna injekcia krvi sa vykonáva veľmi zriedkavo, iba v resuscitačnej praxi a pri operáciách na hrudníku.

Intraoseálna transfúzia krvi.

V súčasnosti sa prakticky nepoužíva. Používal sa pri rozsiahlych popáleninách, keď neboli dostupné periférne žily. Transfúzia sa vykonáva do hrudnej kosti, ilium, calcaneus rýchlosťou 5 až 30 kvapiek za minútu.

Okrem komplikácií spojených priamo s transfúziou krvi je možný rozvoj osteomyelitídy.