Các phương pháp để cầm máu lần cuối bao gồm. Phương pháp cầm máu lần cuối

Phương pháp vật lý để cầm máu

Các phương pháp vật lý còn được gọi là phương pháp nhiệt, vì chúng dựa trên việc sử dụng nhiệt độ thấp hoặc cao.

TIẾP XÚC VỚI NHIỆT ĐỘ THẤP

Cơ chế tác dụng cầm máu của hạ thân nhiệt là co thắt mạch, làm chậm lưu lượng máu và huyết khối mạch máu.

hạ thân nhiệt cục bộ

Để ngăn chảy máu và hình thành khối máu tụ trong giai đoạn đầu sau phẫu thuật, một túi nước đá được đặt lên vết thương trong 1-2 giờ. Phương pháp tương tự có thể áp dụng cho chảy máu cam (chườm đá trên sống mũi), chảy máu dạ dày (chườm đá vùng thượng vị).

Khi chảy máu dạ dày, cũng có thể đưa dung dịch lạnh (+4 ° C) vào dạ dày qua một ống (thông thường, các chất cầm máu hóa học và sinh học được sử dụng).

phẫu thuật lạnh

Phẫu thuật lạnh là một lĩnh vực phẫu thuật đặc biệt. Nhiệt độ rất thấp được sử dụng ở đây. Đóng băng cục bộ được sử dụng trong các hoạt động trên não, gan và điều trị các khối u mạch máu.

TIẾP XÚC VỚI NHIỆT ĐỘ CAO

Cơ chế tác dụng cầm máu của nhiệt độ cao là làm đông protein thành mạch, tăng tốc quá trình đông máu.

Sử dụng dung dịch nóng

Phương pháp có thể được áp dụng trong quá trình hoạt động. Ví dụ, với chảy máu lan tỏa từ vết thương, chảy máu nhu mô gan, giường túi mật, v.v., một chiếc khăn có nước muối nóng được đưa vào vết thương và giữ trong 5-7 phút, sau khi lấy khăn ra, độ tin cậy của cầm máu Được kiểm soát.

điện nhiệt

Diathermocoagulation là phương pháp vật lý được sử dụng phổ biến nhất để cầm máu. Phương pháp này dựa trên việc sử dụng dòng điện tần số cao, dẫn đến đông máu và hoại tử thành mạch tại điểm tiếp xúc với đầu thiết bị và hình thành huyết khối. Diathermocoagulation cho phép bạn nhanh chóng cầm máu từ các mạch máu nhỏ mà không để lại dây chằng (dị vật) và do đó phẫu thuật trên vết thương khô.

Nhược điểm của phương pháp đốt điện: không áp dụng trên các mạch lớn, đông máu quá mức không đúng cách, xảy ra hoại tử trên diện rộng, có thể cản trở quá trình lành vết thương sau đó.

Phương pháp này có thể được sử dụng để chảy máu từ các cơ quan nội tạng (đông máu mạch chảy máu ở niêm mạc dạ dày thông qua máy nội soi xơ hóa), v.v. Đốt điện cũng có thể được sử dụng để tách các mô bằng cách đông máu đồng thời các mạch nhỏ (dụng cụ là dao điện), điều này tạo điều kiện thuận lợi rất nhiều cho một số ca phẫu thuật, vậy làm thế nào để vết rạch về cơ bản không kèm theo chảy máu.

Dựa trên những cân nhắc về tính kháng nguyên, dao điện được sử dụng rộng rãi trong thực hành ung thư.

Laser quang đông, dao mổ plasma

Các phương pháp liên quan đến các công nghệ mới trong phẫu thuật. Chúng dựa trên cùng một nguyên tắc (tạo ra hoại tử đông máu cục bộ) như phương pháp đông máu điện nhiệt, nhưng chúng cho phép bạn cầm máu nhẹ nhàng và kỹ lưỡng hơn. Điều này đặc biệt quan trọng trong chảy máu nhu mô.

Cũng có thể sử dụng phương pháp tách mô (dao mổ plasma). Laser quang đông và dao mổ plasma có hiệu quả cao và tăng khả năng phẫu thuật thông thường và nội soi.

3.3.Phương pháp hóa chất cầm máu lần cuối

Phương pháp hóa học để cầm máu chỉ được sử dụng để chảy máu từ các mạch nhỏ, nhu mô và mao mạch, vì chảy máu từ tĩnh mạch cỡ trung bình hoặc lớn, và thậm chí hơn thế nữa là động mạch, chỉ có thể được cầm máu bằng máy móc.

Theo phương pháp áp dụng, tất cả các phương pháp hóa học được chia thành cục bộ và chung (hoặc hành động cắt bỏ).

Thuốc cầm máu cục bộđược dùng để cầm máu vết thương, trong dạ dày, trên các màng nhầy khác.

Thuốc chính:

1. Nước oxy già. Được sử dụng để cầm máu vết thương, hoạt động bằng cách đẩy nhanh quá trình hình thành huyết khối.

2. Thuốc co mạch (adrenaline). Dùng để cầm máu khi nhổ răng, tiêm vào lớp dưới niêm mạc khi chảy máu dạ dày, v.v.

3. Thuốc ức chế tiêu sợi huyết - axit epsilon-aminocaproic. Được đưa vào dạ dày với chảy máu dạ dày.

4. Chế phẩm gelatin (gelaspon). Chúng là những miếng bọt biển làm từ gelatin tạo bọt. Chúng đẩy nhanh quá trình cầm máu, vì tiểu cầu bị tổn thương khi tiếp xúc với gelatin và các yếu tố đẩy nhanh quá trình hình thành cục máu đông được giải phóng. Ngoài ra, chúng có tác dụng giảm chấn. Dùng để cầm máu trong phòng mổ hoặc vết thương do tai nạn.

5. Sáp. Hiệu ứng cắm của nó được sử dụng. Các xương phẳng bị hư hỏng của hộp sọ được "che phủ" bằng sáp (đặc biệt là trong quá trình khoan hộp sọ).

6. Carbazochrom. Nó được sử dụng cho chảy máu mao mạch và nhu mô. Giảm tính thấm thành mạch, bình thường hóa vi tuần hoàn. Khăn lau được làm ẩm bằng dung dịch được áp dụng cho bề mặt vết thương.

Các chất cầm máu của hành động cắt bỏđược đưa vào cơ thể bệnh nhân, gây ra sự gia tăng quá trình huyết khối trong các mạch bị tổn thương.

Thuốc chính:

1. Thuốc ức chế tiêu sợi huyết (axit epsilon-aminocaproic).

2. Canxi clorua - được sử dụng để hạ canxi máu, vì các ion canxi là một trong những yếu tố của hệ thống đông máu.

3. Các chất đẩy nhanh quá trình hình thành thromboplastin - dicynone, etamsylate (ngoài ra, chúng còn bình thường hóa tính thấm của thành mạch và vi tuần hoàn).

4. Chất của hành động cụ thể. Ví dụ, sử dụng tuyến yên Tại chảy máu tử cung: thuốc gây co cơ tử cung, làm giảm lòng mạch tử cung nên giúp cầm máu.

5. Chất tương tự tổng hợp của vitamin K (Vikasol). Thúc đẩy quá trình tổng hợp prothrombin. Đặc biệt được chỉ định khi chức năng gan bị suy giảm (ví dụ như chảy máu đường mật).

6. Các chất làm bình thường hóa tính thấm của thành mạch (axit ascorbic, rutin, carbazohrom).

Việc cầm máu cuối cùng có thể là cơ học, vật lý, hóa học và sinh học.

Các cách cơ học để cầm máu được thực hiện trong phòng thay đồ hoặc phòng phẫu thuật trong quá trình điều trị vết thương bằng phẫu thuật hoặc trong quá trình phẫu thuật và như sau:

a) kẹp bình bằng kẹp, sau đó dùng dây buộc;

b) trong trường hợp có nguy cơ tuột dây buộc, phương pháp cắt mạch được sử dụng, tức là trước khi buộc, luồn chỉ qua thành mạch hoặc mô xung quanh bằng kim phẫu thuật rồi vòng quanh mạch và bị trói;

c) thắt mạch suốt.

Trong trường hợp chảy máu lan tỏa từ vết thương, khi không thể cầm máu ngay cả khi khâu các mô với số lượng lớn, phương pháp thắt mạch cung cấp cho khu vực này được sử dụng xuyên suốt. Để làm điều này, mạch máu được phơi ra và băng lại bằng một vết mổ riêng phía trên vết thương.

Trong trường hợp tổn thương các mạch chính lớn, việc bảo tồn khả năng tồn tại của cơ quan phụ thuộc vào thời gian thiếu máu cục bộ. Như đã biết, những thay đổi không thể đảo ngược bắt đầu sau 2-4 giờ kể từ khi bắt đầu thiếu máu cục bộ, do đó, khi ngừng chảy máu để duy trì khả năng sống sót của chi (phục hồi tạm thời nguồn cung cấp máu), phương pháp đặt shunt nội mạch tạm thời được sử dụng. Kỹ thuật này rất đơn giản và bao gồm việc đưa bất kỳ ống đàn hồi dày đặc nào vào lòng của động mạch bị tổn thương với việc cố định các đầu của nó bằng dây buộc. Một "shunt" như vậy có thể hoạt động từ vài giờ đến một ngày.

Một cách lý tưởng để cầm máu trong trường hợp mạch máu lớn bị tổn thương là khâu mạch máu, giúp phục hồi tính liên tục của mạch máu. Điều kiện cần thiết để áp dụng chỉ khâu mạch máu là sự hiện diện của kẹp mạch máu, kim không gây chấn thương và kiến thức của bác sĩ phẫu thuật về kỹ thuật khâu mạch máu.

Có hai loại chỉ khâu mạch máu: bên và hình tròn. Chỉ khâu bên được sử dụng cho chấn thương biên của tàu, thực hiện theo chiều dọc (nếu kích thước của lumen của tàu cho phép) hoặc khâu ngang của lumen. Trong trường hợp khuyết rìa động mạch, có thể dùng miếng vá từ autovein hoặc vật liệu tổng hợp để thay thế. Với sự gián đoạn hoàn toàn hoặc giao điểm của động mạch, các đầu của nó được cách ly và hai chỉ khâu không gây chấn thương được đặt ở hai mép đối diện của mạch máu, các mép sau được nối lại với nhau, các chỉ khâu được buộc và dùng làm giá đỡ, các mép của mạch máu được khâu lại bằng một đường khâu xoắn liên tục. Với một khiếm khuyết đáng kể trong tàu, tính liên tục của nó được phục hồi bằng một bộ phận giả. Khi khâu mạch máu và không có giá đỡ mạch máu, có thể sử dụng kẹp trực tiếp.

Các cách vật lý để cầm máu bao gồm việc sử dụng nhiệt độ cao và thấp. Tác dụng cầm máu của nhiệt độ cao dựa trên tác dụng khử của nó đối với mạch và với số lượng đáng kể, protein mô và máu đông lại. Với mục đích này, dung dịch natri clorua đẳng trương thường được sử dụng nhất, được đun nóng đến 45-50 ° C. Hiện nay, quá trình đốt điện đã trở nên phổ biến - một điện cực đông tụ ở dạng tấm chì xuyên qua gạc được làm ẩm bằng dung dịch natri clorua đẳng trương, miếng đệm được cố định chặt vào chi, điện cực thứ hai được tự do và khi chạm vào kẹp cầm máu, quá trình đông máu xảy ra. Trong thực hành y tế, tia laze bắt đầu được sử dụng như một con dao mổ, cho phép thực hiện ca phẫu thuật mà không đổ máu. Nhiệt độ thấp hoạt động tương tự như nhiệt độ cao, tùy thuộc vào cường độ, gây ra co thắt hoặc đông máu của các mô. Với mục đích này, băng, carbon dioxide kết tinh (đá khô), nitơ lỏng được sử dụng.

phương pháp hóa họcđược chia thành các chất cầm máu bên ngoài và bên trong. Bên ngoài sử dụng dung dịch hydro peroxide 3-5%, dung dịch adrenaline 1: 1000, v.v... Các tác nhân bên trong bao gồm hai nhóm: nhóm gây co mạch (chế phẩm ergot, adrenaline, norepinephrine, mezaton, v.v.) và nhóm gây co mạch. tăng đông máu (vikasol, canxi clorua, gelatin, axit aminocaproic, hemophobin, v.v.).

Các phương pháp cầm máu sinh học dựa trên việc sử dụng bên ngoài và bên trong các sản phẩm máu và các thành phần của nó (miếng bọt biển cầm máu, màng fibrin, truyền một phần máu với liều lượng nhỏ, fibrinogen, huyết tương tươi).

Việc áp dụng một garô.

Dây nịt tiêu chuẩn là dây cao su 1,5 m chiều dài với chuỗi và móc ở hai đầu

Chỉ định Thông thường, phương pháp này được sử dụng để cầm máu từ vết thương ở tứ chi, mặc dù có thể dùng garô ở vùng bẹn và nách, cũng như ở cổ (trong trường hợp này, bó mạch thần kinh ở bên không bị tổn thương là được bảo vệ bằng thanh nẹp Cramer).

Các chỉ định chính cho việc áp dụng garô là:

Chảy máu động mạch từ vết thương ở tứ chi;

Bất kỳ chảy máu ồ ạt từ vết thương chân tay.

Điểm đặc biệt của phương pháp này là sự chấm dứt hoàn toàn của dòng máu ở xa đến garô. Điều này đảm bảo độ tin cậy của việc cầm máu, nhưng đồng thời gây thiếu máu cục bộ mô đáng kể. Ngoài ra, garô có thể nén dây thần kinh và các thành phần khác.

Các quy tắc chung để áp dụng garô:

· Nâng cao chi trước khi đặt garo.

· Garô được áp dụng gần vết thương và càng gần vết thương càng tốt.

· Cần phải đặt một miếng vải (quần áo) dưới garô.

· Khi quấn garô nên thực hiện 2-3 vòng, kéo căng đều và các vòng không được chồng lên nhau.

· Sau khi áp dụng garô, hãy chắc chắn cho biết thời gian áp dụng chính xác của nó (thường là một mảnh giấy có mục nhập tương ứng được đặt dưới garô).

· Phải tiếp cận được phần cơ thể nơi đặt garô để kiểm tra.

Nạn nhân garô được vận chuyển và điều trị đầu tiên. Các tiêu chí cho một garô được áp dụng chính xác là:

Cầm máu;

Chấm dứt xung ngoại vi;

Đầu chi nhợt nhạt và lạnh.

Điều cực kỳ quan trọng là garô không được giữ quá 2 giờ ở chi dưới và 1,5 giờ ở chi trên. Nếu không, có thể phát triển hoại tử trên chi do thiếu máu cục bộ kéo dài.

Nếu phải vận chuyển nạn nhân trong một thời gian dài, garo được hòa tan mỗi giờ trong khoảng 10-15 phút, thay thế phương pháp này bằng phương pháp cầm máu tạm thời khác (đè ngón tay).

Cần phải loại bỏ garô dần dần làm suy yếu nó, với sự ra đời sơ bộ của thuốc giảm đau.

Ngón tay ấn động mạch.

Đây là một phương pháp khá đơn giản, không yêu cầu bất kỳ vật phẩm phụ trợ nào. Ưu điểm chính của nó là khả năng thực hiện càng nhanh càng tốt. Nhược điểm là nó chỉ có thể được áp dụng hiệu quả trong 10-15 phút, nghĩa là nó có tác dụng ngắn hạn.

Chỉ định: Một dấu hiệu cho việc ấn động mạch bằng ngón tay là chảy máu ồ ạt từ vùng động mạch tương ứng.

Áp lực ngón tay đặc biệt quan trọng trong các tình huống khẩn cấp, để chuẩn bị cho một phương pháp cầm máu khác, chẳng hạn như garô.

Ấn mạch chảy máu ở vết thương.

Kỹ thuật này thường được các bác sĩ phẫu thuật sử dụng khi bị chảy máu trong quá trình phẫu thuật. Vị trí tổn thương của tàu hoặc tàu bị chèn ép gần bằng một hoặc nhiều ngón tay. Cầm máu, dẫn lưu vết thương và chọn phương pháp cầm máu cuối cùng thích hợp nhất.

uốn cong chi tối đa.

Phương pháp này có hiệu quả đối với chảy máu từ đùi (khớp hông gập tối đa), từ cẳng chân và bàn chân (khớp gối gập tối đa), bàn tay và cẳng tay (khớp khuỷu gập tối đa)

Các chỉ định để thực hiện động tác gập tối đa cũng giống như khi đặt garô. Phương pháp này ít đáng tin cậy hơn, nhưng đồng thời ít chấn thương hơn. Gập tối đa khớp khuỷu tay thường được dùng để cầm máu sau khi chọc tĩnh mạch cổ tay (truyền tĩnh mạch, lấy mẫu máu nghiên cứu).

Vị trí nâng cao của chi.

Phương pháp này cực kỳ đơn giản - bạn chỉ cần nâng chi bị thương lên.

Chỉ định sử dụng - chảy máu tĩnh mạch hoặc mao mạch, đặc biệt là từ vết thương ở chi dưới.

Băng ép.

Chỉ định Băng áp lực được sử dụng cho chảy máu vừa phải từ các mạch máu nhỏ, chảy máu tĩnh mạch hoặc mao mạch. Phương pháp này là phương pháp được lựa chọn để cầm máu do giãn tĩnh mạch chi dưới. Băng ép có thể được áp dụng cho vết thương để ngăn chảy máu trong giai đoạn đầu sau phẫu thuật (sau phẫu thuật cắt bỏ tĩnh mạch, cắt bỏ tuyến vú theo từng khu vực, phẫu thuật cắt bỏ vú, v.v.).

Để áp dụng phương pháp đơn giản này, chỉ cần băng và băng.

Kỹ thuật: Một số khăn ăn vô trùng được áp dụng cho vết thương (đôi khi một con lăn được hình thành trên đầu trang) và băng bó chặt chẽ. Trước khi băng bó một chi, cần phải đặt nó ở một vị trí cao. Băng nên được áp dụng từ ngoại vi đến trung tâm.

Băng vệ sinh vết thương.

Phương pháp này được chỉ định cho chảy máu vừa phải từ các mạch nhỏ, chảy máu mao mạch và tĩnh mạch khi có vết thương. Thường được sử dụng trong các ca phẫu thuật. Khoang vết thương được lấp đầy bằng băng vệ sinh, được để lại trong một thời gian. Máu ngừng chảy, có thời gian và sau đó sử dụng một phương pháp phù hợp hơn.

Áp kẹp vào mạch chảy máu.

Phương pháp được chỉ định để cầm máu trong quá trình phẫu thuật. Nếu chảy máu xảy ra, bác sĩ phẫu thuật sẽ áp dụng một kẹp cầm máu đặc biệt (kẹp Billroth) vào mạch chảy máu. Máu ngừng chảy. Sau đó áp dụng phương pháp cuối cùng, thường xuyên nhất - thắt mạch. Khi áp dụng kẹp, cần nhớ rằng việc này phải được thực hiện rất cẩn thận, dưới sự kiểm soát trực quan, nếu không, ngoài mạch bị hỏng, mạch hoặc dây thần kinh chính cũng có thể lọt vào kẹp, dẫn đến hậu quả xấu.

Shunt tạm thời.

Nó được sử dụng để làm hỏng các mạch chính lớn, chủ yếu là các động mạch, việc ngừng lưu lượng máu qua đó có thể dẫn đến hậu quả không mong muốn và thậm chí đe dọa tính mạng của bệnh nhân.

Bác sĩ phẫu thuật có thể chèn một ống (polyethylene, thủy tinh) vào đầu bị hư hỏng của tàu và cố định nó bằng hai dây buộc. Tuần hoàn máu ở chi được bảo toàn, không chảy máu. Các shunt tạm thời như vậy hoạt động trong vài giờ và thậm chí vài ngày, sau đó có thể thực hiện khâu mạch máu hoặc tạo mạch giả.

Các phương pháp cầm máu lần cuối.

Các phương pháp để cầm máu lần cuối, tùy thuộc vào bản chất của các phương pháp được sử dụng, được chia thành cơ học, vật lý (nhiệt) và hóa học.

phương pháp cơ học.

Các phương pháp cầm máu cơ học là đáng tin cậy nhất. Trong trường hợp tổn thương mạch lớn, mạch trung bình, động mạch, chỉ sử dụng các phương pháp cơ học mới dẫn đến cầm máu đáng tin cậy.

Thắt mạch.

Có hai loại thắt mạch:

Băng bó mạch máu trong vết thương;

thắt của tàu trong suốt.

Thắt mạch máu trong vết thương.

Chắc chắn tốt hơn là băng bó mạch máu trong vết thương, trực tiếp tại vị trí bị thương. Phương pháp cầm máu này làm gián đoạn việc cung cấp máu cho một lượng mô tối thiểu.

Thông thường, trong quá trình phẫu thuật, bác sĩ phẫu thuật áp dụng kẹp cầm máu vào mạch máu, sau đó thắt dây buộc (phương pháp tạm thời được thay thế bằng phương pháp cuối cùng). Một giải pháp thay thế cho việc thắt là cắt mạch máu - áp dụng các kẹp kim loại (kẹp) vào mạch máu bằng một dụng cụ cắt đặc biệt. Phương pháp này được sử dụng rộng rãi trong phẫu thuật nội soi.

thắt mạch trong suốt

Việc thắt mạch trong suốt về cơ bản khác với việc thắt trong vết thương. Ở đây chúng ta đang nói về việc thắt một thân chính khá lớn, thường ở gần vị trí chấn thương. Trong trường hợp này, dây buộc chặn dòng máu chảy qua mạch chính một cách đáng tin cậy, nhưng chảy máu, mặc dù ít nghiêm trọng hơn, vẫn có thể tiếp tục do dòng máu chảy ngược và chảy ngược.

Nhược điểm chính của việc thắt mạch trong suốt là nguồn cung cấp máu cho một lượng mô lớn hơn nhiều so với việc thắt trong vết thương. Phương pháp này về cơ bản là tồi tệ hơn và được sử dụng như một biện pháp cưỡng bức.

Có hai chỉ định thắt mạch suốt.

Mạch bị tổn thương không thể được phát hiện, điều này xảy ra khi chảy máu từ một khối cơ lớn (chảy máu ồ ạt từ lưỡi - chúng buộc động mạch lưỡi trên cổ trong tam giác Pirogov; chảy máu từ cơ mông - buộc động mạch chậu trong , vân vân.);

Chảy máu thứ phát từ vết thương có mủ hoặc thối rữa (băng bó vết thương là không đáng tin cậy, vì có thể làm xói mòn gốc mạch máu và chảy máu tái phát, ngoài ra, các thao tác trên vết thương có mủ sẽ góp phần vào sự tiến triển của quá trình viêm).

Kỹ thuật thực hiện, phù hợp với dữ liệu địa hình và giải phẫu, phơi bày và buộc tàu dọc theo chiều dài gần vùng tổn thương.

Tàu may.

Trong trường hợp mạch chảy máu không nhô lên trên bề mặt vết thương và không thể cầm được bằng kẹp, dây ví hoặczđường may định hình xuyên qua các mô xung quanh với sự thắt chặt sau đó của sợi chỉ - cái gọi là sự nhấp nháy của tàu

Xoắn, dập mạch máu.

Phương pháp này hiếm khi được sử dụng để chảy máu từ các tĩnh mạch nhỏ. Một cái kẹp được áp vào tĩnh mạch, nó ở trên mạch một thời gian rồi lấy ra. Ngoài ra, bạn có thể xoay kẹp quanh trục của nó nhiều lần. Trong trường hợp này, thành mạch bị tổn thương tối đa và nó bị huyết khối một cách đáng tin cậy.

Băng vết thương, băng ép.

Băng ép vết thương và băng ép là những phương pháp cầm máu tạm thời, nhưng chúng cũng có thể trở nên dứt điểm. Sau khi tháo băng ép (thường vào ngày thứ 2-3) hoặc tháo băng vệ sinh (thường vào ngày thứ 4-5), máu có thể ngừng chảy do huyết khối của các mạch bị tổn thương.

Thuyên tắc mạch.

Phương pháp đề cập đến phẫu thuật nội mạch. Nó được sử dụng để chảy máu từ các nhánh của động mạch phổi, nhánh cuối của động mạch chủ bụng, v.v. Trong trường hợp này, theo phương pháp Seldinger, động mạch đùi được đặt ống thông, ống thông được đưa đến vùng chảy máu, chất cản quang. tác nhân được tiêm và, thực hiện tia X, vị trí tổn thương được tiết lộ (giai đoạn chẩn đoán). Sau đó, một chất gây thuyên tắc nhân tạo (xoắn ốc, chất hóa học: cồn, polystyrene) được đưa dọc theo ống thông đến vị trí tổn thương, bao phủ lòng mạch và gây huyết khối nhanh chóng.

Phương pháp này ít sang chấn, tránh can thiệp phẫu thuật lớn nhưng chỉ định hạn chế. Ngoài ra, cần có thiết bị đặc biệt và nhân viên có trình độ.

Phương pháp đặc biệt để chống chảy máu.

Các phương pháp cầm máu cơ học bao gồm một số loại phẫu thuật: cắt lách để chảy máu nhu mô từ lá lách, cắt bỏ dạ dày để chảy máu do loét hoặc khối u, cắt thùy để chảy máu phổi, v.v.

Một trong những phương pháp cơ học đặc biệt là sử dụng đầu dò bịt trong chảy máu do giãn tĩnh mạch thực quản, một biến chứng khá phổ biến của các bệnh gan kèm theo hội chứng tăng áp lực tĩnh mạch cửa. Thông thường, một đầu dò Blackmore được sử dụng, được trang bị hai vòng bít, phần dưới được cố định trong tim và phần trên, khi được bơm căng, sẽ nén các tĩnh mạch đang chảy máu của thực quản.

Khâu mạch máu và tái tạo mạch máu.

Nó được sử dụng trong trường hợp tổn thương các mạch chính lớn, việc ngừng lưu thông máu sẽ dẫn đến hậu quả bất lợi cho cuộc sống của bệnh nhân. Phân biệt giữa đường may thủ công và cơ khí.

Khi sử dụng chỉ khâu thủ công, vật liệu khâu không thấm hút gây chấn thương được sử dụng (chỉ số 4 / 0-7 / 0, tùy thuộc vào kích thước của tàu).

Với tính chất khác nhau của tổn thương thành mạch, nhiều lựa chọn khác nhau để can thiệp tái tạo mạch được sử dụng: khâu bên, vá bên, cắt bỏ bằng nối từ đầu đến cuối, chân tay giả (thay thế mạch), shunt (tạo đường vòng cho máu).

Khi tái tạo mạch máu, tĩnh mạch tự động, động mạch tự động hoặc vật liệu tổng hợp thường được sử dụng làm bộ phận giả và ống dẫn lưu. Trong một hoạt động mạch máu như vậy, các yêu cầu sau phải được đáp ứng:

độ kín cao;

Không có rối loạn lưu lượng máu (co thắt và dòng xoáy);

Càng ít vật liệu khâu càng tốt trong lòng mạch;

So sánh chính xác các lớp của thành mạch máu.

Cần lưu ý rằng chỉ với phương pháp này, việc cung cấp máu cho các mô mới được bảo toàn hoàn toàn.

phương pháp vật lý.

Chúng chỉ được sử dụng để chảy máu từ các mạch nhỏ, nhu mô và mao mạch, vì chảy máu từ tĩnh mạch cỡ trung bình hoặc lớn, và thậm chí hơn thế nữa là động mạch, chỉ có thể được cầm máu bằng máy móc.

Các phương pháp vật lý còn được gọi là phương pháp nhiệt, vì chúng dựa trên việc sử dụng nhiệt độ thấp hoặc cao.

Tác động của nhiệt độ thấp.

Cơ chế tác dụng cầm máu của hạ thân nhiệt là co thắt mạch, làm chậm lưu lượng máu và huyết khối mạch máu.

hạ thân nhiệt cục bộ.

Để ngăn ngừa chảy máu và hình thành khối máu tụ trong giai đoạn đầu sau phẫu thuật, một túi nước đá được đặt lên vết thương trong 1-2 giờ. Phương pháp có thể áp dụng cho trường hợp chảy máu cam (chườm đá trên sống mũi), chảy máu dạ dày (chườm đá vùng thượng vị).

Khi chảy máu dạ dày, cũng có thể đưa dung dịch lạnh (+4 ° C) vào dạ dày qua một ống (thông thường, các chất cầm máu hóa học và sinh học được sử dụng).

Phẫu thuật lạnh.

Tiếp xúc với nhiệt độ cao.

Cơ chế tác dụng cầm máu của nhiệt độ cao là làm đông protein thành mạch, tăng tốc quá trình đông máu.

Sử dụng dung dịch nóng

Diathermocoagulation.

Diathermocoagulation là phương pháp vật lý được sử dụng phổ biến nhất để cầm máu. Phương pháp này dựa trên việc sử dụng dòng điện tần số cao, dẫn đến đông máu và hoại tử thành mạch tại điểm tiếp xúc với đầu thiết bị và hình thành huyết khối. Nếu không có quá trình đông nhiệt, giờ đây không thể hình dung được một ca phẫu thuật nghiêm trọng nào. Nó cho phép bạn nhanh chóng cầm máu từ các mạch máu nhỏ mà không để lại dây chằng (dị vật) và do đó phẫu thuật trên vết thương khô. Nhược điểm của phương pháp đốt điện: với quá trình đông máu, hoại tử lan rộng xảy ra, có thể gây khó khăn cho việc chữa lành vết thương sau này.

Phương pháp này có thể được sử dụng để chảy máu từ các cơ quan nội tạng (đông máu mạch chảy máu ở niêm mạc dạ dày thông qua máy nội soi xơ hóa), v.v. Đốt điện cũng có thể được sử dụng để tách các mô bằng cách đông máu đồng thời các mạch nhỏ (dụng cụ - "dao điện"), điều này tạo thuận lợi rất nhiều cho một số ca phẫu thuật , vì vết rạch về cơ bản không kèm theo chảy máu.

Dựa trên những cân nhắc về tính kháng nguyên, dao điện được sử dụng rộng rãi trong thực hành ung thư.

Laser quang đông, dao mổ plasma.

Các phương pháp liên quan đến các công nghệ mới trong phẫu thuật. Chúng dựa trên nguyên tắc tương tự như quá trình đông máu (tạo ra hoại tử đông máu cục bộ), nhưng cho phép cầm máu nhẹ nhàng và liều lượng hơn. Điều này đặc biệt quan trọng trong chảy máu nhu mô.

phương pháp hóa học.

Theo phương pháp áp dụng, tất cả các phương pháp hóa học được chia thành cục bộ và chung (hoặc hành động cắt bỏ).

Thuốc cầm máu cục bộ.

Các chất cầm máu cục bộ được sử dụng để cầm máu vết thương, trong dạ dày và trên các màng nhầy khác.

hydro peroxide. Được sử dụng để cầm máu vết thương, hoạt động bằng cách đẩy nhanh quá trình hình thành huyết khối.

Thuốc co mạch (adrenaline). Chúng được sử dụng để ngăn chảy máu khi nhổ răng, tiêm vào lớp dưới niêm mạc khi chảy máu dạ dày, v.v.

Thuốc ức chế tiêu sợi huyết - axit ε-aminocaproic. Được đưa vào dạ dày với chảy máu dạ dày.

Chế phẩm gelatin (gelaspon). Chúng là những miếng bọt biển làm từ gelatin tạo bọt. Chúng đẩy nhanh quá trình cầm máu, vì tiểu cầu bị tổn thương khi tiếp xúc với gelatin và các yếu tố đẩy nhanh quá trình hình thành cục máu đông được giải phóng. Ngoài ra, chúng có tác dụng giảm chấn. Dùng để cầm máu trong phòng mổ hoặc vết thương do tai nạn.

sáp. Hiệu ứng cắm của nó được sử dụng. Các xương phẳng bị hư hỏng của hộp sọ được phủ bằng sáp (đặc biệt là trong quá trình phẫu thuật khoan hộp sọ).

Carbazochrom. Nó được sử dụng cho chảy máu mao mạch và nhu mô. Giảm tính thấm thành mạch, bình thường hóa vi tuần hoàn. Khăn lau được làm ẩm bằng dung dịch được áp dụng cho bề mặt vết thương.

Kaprofer. Nó được sử dụng để tưới niêm mạc dạ dày trong quá trình chảy máu do xói mòn vết loét cấp tính (bằng nội soi).

Các chất cầm máu của hành động cắt bỏ

Các chất cầm máu có tác dụng cắt bỏ được đưa vào cơ thể bệnh nhân, gây ra sự gia tăng quá trình huyết khối của các mạch bị tổn thương.

· Thuốc ức chế tiêu sợi huyết (axit ε-aminocaproic).

· Canxi clorua - được sử dụng cho hạ canxi máu, dưới dạng ion

· Canxi là một trong những yếu tố của hệ thống đông máu.

· Các chất làm tăng tốc độ hình thành thromboplastin - dicynone, etamsylate (ngoài ra, chúng bình thường hóa tính thấm của thành mạch và vi tuần hoàn).

· Các chất với một hành động cụ thể. Ví dụ, pituitrin cho chảy máu tử cung: thuốc gây co cơ tử cung, làm giảm lòng mạch của tử cung và do đó giúp cầm máu.

Các phương pháp để cầm máu lần cuối, tùy thuộc vào bản chất của các phương pháp được sử dụng, được chia thành cơ học, vật lý (nhiệt) và hóa học.

phương pháp cơ học.

Thắt mạch.

Có hai loại thắt mạch:

Băng bó mạch máu trong vết thương;

thắt của tàu trong suốt.

Thắt mạch máu trong vết thương.

thắt mạch trong suốt

Có hai chỉ định thắt mạch suốt.

Kỹ thuật thực hiện, phù hợp với dữ liệu địa hình và giải phẫu, phơi bày và buộc tàu dọc theo chiều dài gần vùng tổn thương.

Tàu may.

Trong trường hợp mạch chảy máu không nhô lên trên bề mặt vết thương và không thể kẹp nó bằng kẹp, một dây ví hoặc chỉ khâu hình chữ Z sẽ được áp dụng xung quanh mạch thông qua các mô xung quanh, sau đó thắt chặt nó. chủ đề - cái gọi là nhấp nháy của tàu

Xoắn, dập mạch máu.

Băng vết thương, băng ép.

Thuyên tắc mạch.

Phương pháp này ít sang chấn, tránh can thiệp phẫu thuật lớn nhưng chỉ định hạn chế. Ngoài ra, cần có thiết bị đặc biệt và nhân viên có trình độ.

Phương pháp đặc biệt để chống chảy máu.

Khâu mạch máu và tái tạo mạch máu.

Khi sử dụng chỉ khâu thủ công, vật liệu khâu không thấm hút gây chấn thương được sử dụng (chỉ số 4 / 0-7 / 0, tùy thuộc vào kích thước của tàu).

độ kín cao;

Không có rối loạn lưu lượng máu (co thắt và dòng xoáy);

Càng ít vật liệu khâu càng tốt trong lòng mạch;

So sánh chính xác các lớp của thành mạch máu.

Cần lưu ý rằng chỉ với phương pháp này, việc cung cấp máu cho các mô mới được bảo toàn hoàn toàn.

phương pháp vật lý.

Các phương pháp vật lý còn được gọi là phương pháp nhiệt, vì chúng dựa trên việc sử dụng nhiệt độ thấp hoặc cao.

Tác động của nhiệt độ thấp.

Cơ chế tác dụng cầm máu của hạ thân nhiệt là co thắt mạch, làm chậm lưu lượng máu và huyết khối mạch máu.

hạ thân nhiệt cục bộ.

Khi chảy máu dạ dày, cũng có thể đưa dung dịch lạnh (+4 ° C) vào dạ dày qua một ống (thông thường, các chất cầm máu hóa học và sinh học được sử dụng).

Phẫu thuật lạnh.

Tiếp xúc với nhiệt độ cao.

Cơ chế tác dụng cầm máu của nhiệt độ cao là làm đông protein thành mạch, tăng tốc quá trình đông máu.

Sử dụng dung dịch nóng

Diathermocoagulation.

Diathermocoagulation là phương pháp vật lý được sử dụng phổ biến nhất để cầm máu. Phương pháp này dựa trên việc sử dụng dòng điện tần số cao, dẫn đến đông máu và hoại tử thành mạch tại điểm tiếp xúc với đầu thiết bị và hình thành huyết khối. Nếu không có quá trình đông nhiệt, giờ đây không thể hình dung được một ca phẫu thuật nghiêm trọng nào. Nó cho phép bạn nhanh chóng cầm máu từ các mạch máu nhỏ mà không để lại dây chằng (dị vật) và do đó phẫu thuật trên vết thương khô. Nhược điểm của phương pháp đốt điện: với quá trình đông máu, hoại tử lan rộng xảy ra, có thể gây khó khăn cho việc chữa lành vết thương sau này.

Phương pháp này có thể được sử dụng để chảy máu từ các cơ quan nội tạng (đông máu mạch chảy máu ở niêm mạc dạ dày thông qua máy nội soi xơ hóa), v.v. Đốt điện cũng có thể được sử dụng để tách các mô bằng cách đông máu đồng thời các mạch nhỏ (dụng cụ là “dao điện”) , tạo điều kiện thuận lợi cho một số ca phẫu thuật , vì vết mổ về cơ bản không kèm theo chảy máu.

Dựa trên những cân nhắc về tính kháng nguyên, dao điện được sử dụng rộng rãi trong thực hành ung thư.

Laser quang đông, dao mổ plasma.

phương pháp hóa học.

Theo phương pháp áp dụng, tất cả các phương pháp hóa học được chia thành cục bộ và chung (hoặc hành động cắt bỏ).

Thuốc cầm máu cục bộ.

Các chất cầm máu cục bộ được sử dụng để cầm máu vết thương, trong dạ dày và trên các màng nhầy khác.

hydro peroxide. Được sử dụng để cầm máu vết thương, hoạt động bằng cách đẩy nhanh quá trình hình thành huyết khối.

Thuốc co mạch (adrenaline). Chúng được sử dụng để ngăn chảy máu khi nhổ răng, tiêm vào lớp dưới niêm mạc khi chảy máu dạ dày, v.v.

Thuốc ức chế tiêu sợi huyết - axit ε-aminocaproic. Được đưa vào dạ dày với chảy máu dạ dày.

Kaprofer. Nó được sử dụng để tưới niêm mạc dạ dày trong quá trình chảy máu do xói mòn vết loét cấp tính (bằng nội soi).

Các chất cầm máu của hành động cắt bỏ

Các chất cầm máu có tác dụng cắt bỏ được đưa vào cơ thể bệnh nhân, gây ra sự gia tăng quá trình huyết khối của các mạch bị tổn thương.

Thuốc ức chế tiêu sợi huyết (axit ε-aminocaproic).

Canxi clorua - được sử dụng cho hạ canxi máu, dưới dạng ion

· Canxi là một trong những yếu tố của hệ thống đông máu.

Các chất làm tăng tốc độ hình thành thromboplastin - dicynone, etamzilat (ngoài ra, chúng bình thường hóa tính thấm của thành mạch và vi tuần hoàn).

· Các chất của hành động cụ thể. Ví dụ, pituitrin cho chảy máu tử cung: thuốc gây co cơ tử cung, làm giảm lòng mạch của tử cung và do đó giúp cầm máu.

Các chất tương tự tổng hợp của vitamin K (Vikasol). Thúc đẩy quá trình tổng hợp prothrombin. Nó được chỉ định khi vi phạm chức năng gan (ví dụ, với chảy máu đường mật).

Các chất bình thường hóa tính thấm của thành mạch (axit ascorbic, rutin, carbazohrom).

Lịch sử học thuyết truyền máu. Cơ sở miễn dịch của truyền máu.

Có bốn giai đoạn chính trong lịch sử truyền máu.

Thời kỳ thứ nhất: từ cổ đại đến 1628.

Giai đoạn thứ hai: từ 1628 đến 1901.

Thời kỳ thứ ba: từ năm 1901 đến lần truyền máu đầu tiên, có tính đến liên kết nhóm (Kreil, V.N. Shamov).

Giai đoạn thứ tư: từ lần truyền máu đầu tiên, có tính đến liên kết nhóm, cho đến ngày nay.

Vào thời cổ đại, trong nhiều dân tộc, việc điều trị nhiều bệnh bằng cách uống máu đã trở nên phổ biến. Sự thống trị của cái gọi là chủ nghĩa ma cà rồng tiếp tục kéo dài đến thời Trung cổ.

Ý tưởng trẻ hóa bằng cách truyền máu vào các mạch đã không tự biện minh. Sự thật về việc truyền máu cho Giáo hoàng Innocent từ hai chàng trai trẻ vào năm 1492 đã được biết đến.

Năm 1628, Harvey đã mô tả các vòng tuần hoàn máu, và vào năm 1667, Denis và Emerets ở Pháp đã truyền máu cừu cho bệnh nhân, nhưng lần truyền máu thứ tư đã kết thúc bằng cái chết của bệnh nhân. Một phiên tòa đặc biệt đã quyết định chỉ áp dụng bất kỳ phương pháp tiêm máu nào sau khi được sự cho phép đặc biệt của Khoa Y của Đại học Paris.

Tuy nhiên, vào năm 1675 Vatican đã ban hành phán quyết cấm truyền máu cho một người, và công việc đã bị cắt giảm trong gần một thế kỷ rưỡi.

Năm 1819, bác sĩ người Anh I. Blendel lần đầu tiên truyền máu từ người này sang người khác bằng một thiết bị đặc biệt.

Ca truyền máu thành công đầu tiên ở Nga vào năm 1832 được thực hiện bởi G. Wolf. Đối với vết thương và mất máu, N.I. Pirogov, I.V. Buyalsky, S.P. Kolomnin. Ở Nga, từ năm 1832 đến cuối thế kỷ 19, 60 ca truyền máu đã được thực hiện, tuy nhiên, cả ở nước ta và nước ngoài, những công việc này đều mang tính chất kinh nghiệm.

Việc truyền máu trở nên dựa trên cơ sở khoa học và ít nguy hiểm hơn sau khi K. Landsteiner xác định vào năm 1901 rằng huyết thanh máu người có thể kết dính (kết dính) với hồng cầu của người khác. Hiện tượng này được gọi là “hiện tượng ngưng kết đồng phân”.

Landsteiner mô tả ba nhóm máu, và năm 1907 Jansky mô tả nhóm máu thứ tư.

Nhóm máu được xác định bởi sự hiện diện của các kháng nguyên đặc hiệu nhóm trong hồng cầu - agglutinogens: A, B và O, và trong huyết thanh - kháng thể: α và β. Agglutinogens là polypeptide xuất hiện vào tháng thứ 3 của quá trình phát triển bào thai. Các agglutinin huyết thanh được tìm thấy trong các phân đoạn globulin và hiệu giá tối đa của chúng là trong độ tuổi từ 5 đến 20 tuổi.

Phản ứng kết dính hồng cầu xảy ra trong những trường hợp xảy ra sự gặp gỡ của các agglutinogen và agglutinin cùng tên: A và α, B và β. Hơn nữa, hồng cầu của máu người hiến bị ngưng kết.

Theo cách phân loại của K. Landsteiner và J. Jansky, hiện nay người ta phân biệt các nhóm máu sau:

Nhóm I - O (I) αβ - không có agglutinogens A và B trong hồng cầu, có agglutinogen O, nhưng vì không có kháng thể với nó nên nó không có ý nghĩa thực tế. Trong huyết tương, huyết thanh, những cá thể này có các agglutinin α và β.

Nhóm II - A (II) β - trong hồng cầu có agglutinogen A, trong huyết thanh - agglutinin β.

Nhóm III - B (III) α - agglutinogen B trong hồng cầu, agglutinin α trong huyết thanh.

Nhóm IV - AB (IV) o - trong hồng cầu có agglutinogen A và B, không có agglutinin trong huyết thanh.

Nhóm máu không thay đổi trong suốt cuộc đời của một người.

Dựa trên khám phá của K. Landsteiner, năm 1907. G. Krail đã thực hiện ca truyền máu đầu tiên có tính đến liên kết nhóm. Năm 1919, lần truyền máu đầu tiên ở Nga, có tính đến liên kết nhóm, được thực hiện bởi V.N. Shamov.

Natri citrate, được đề xuất vào năm 1914 bởi V.A. Yurevich và N.K. Rozengart để ngăn ngừa đông máu, đã có thể bắt đầu nghiên cứu về việc bảo quản nó. Năm 1934, các nhà khoa học lỗi lạc trong nước A.N. Filatov và N.G. Kartashevsky lần đầu tiên trên thế giới đã tách máu của người hiến thành các phần nhỏ, đặt nền móng cho việc sản xuất các thành phần và sản phẩm máu, đồng thời xác định một hướng đi mới, hiện đại trong lĩnh vực truyền máu - truyền máu. sử dụng các thành phần riêng lẻ và phân số máu.

Năm 1940, Landsteiner và Wiener đã phát hiện ra một kháng nguyên khác có trong hồng cầu của con người, chỉ định nó là Rh (yếu tố rhesus).

Hóa ra, yếu tố Rhesus được phân bổ không đồng đều giữa các đại diện của các chủng tộc riêng lẻ. Trong dân số châu Âu, kháng nguyên này hiện diện ở 85% người (Rh dương tính) và ở 15% (người Rh âm tính) thì không có. Ở những người thuộc chủng tộc Mongoloid, khuôn mặt Rh âm tính chỉ chiếm 0,5%.

Hiện tại, 6 loại kháng nguyên chính của hệ thống Rh (Rh - Hr) đã được biết đến, tạo nên hệ thống đa alen:

r(D), r | (C), r|| (E)

giờ (d), giờ | (c), giờ (e).

Điều quan trọng nhất trong số này là kháng nguyên Rh, có hoạt tính miễn dịch cao nhất.

Khám phá của Landsteiner và Wiener đã xác định các yêu cầu cơ bản đối với mỗi lần truyền máu: truyền máu, có tính đến khả năng tương thích với các kháng nguyên AB0 và Rh.

Hệ thống nhóm hồng cầu. Hệ thống nhóm AB0 và hệ thống nhóm Rhesus. Phương pháp xác định nhóm máu theo hệ thống AB0 và Rhesus.

Tùy thuộc vào sự hiện diện của agglutinogens A và B trong hồng cầu và trong huyết thanh của agglutinin tương ứng α và β của chúng, tất cả mọi người được chia thành bốn nhóm:

Nhóm O (I) - không có agglutinogen trong hồng cầu, trong huyết thanh có agglutinin α và β.

Nhóm A (II) - agglutinogen A trong hồng cầu, agglutinin β trong huyết thanh.

Nhóm B (III) - agglutinogen B trong hồng cầu, agglutinin α trong huyết thanh.

Nhóm AB (IV) - trong hồng cầu agglutinogens A và B, không có agglutinin trong huyết thanh.

Gần đây, nhiều loại kháng nguyên cổ điển A và B, cũng như các kháng nguyên khác, đã được tìm thấy trong hệ thống AB0.

Việc xác định nhóm máu dựa trên phản ứng ngưng kết hồng cầu trực tiếp ở nhiệt độ phòng, phản ứng này phát triển khi các agglutinin và agglutinogen cùng tên gặp nhau.

Để xác định nhóm máu theo hệ thống AB0 có 3 cách:

1. với việc sử dụng huyết thanh tiêu chuẩn có chứa các agglutinin tự nhiên ở mức độ vừa đủ, cho phép xác định agglutinogen nào có trong hồng cầu của máu được xét nghiệm;

2. với việc sử dụng các chế phẩm tế bào lai có chứa kháng thể miễn dịch chống A, chống B và chống AB, cũng giúp phát hiện agglutinogens A và B trong hồng cầu của máu được xét nghiệm;

3. Sử dụng huyết thanh chuẩn và hồng cầu chuẩn (phương pháp chéo). Trong trường hợp này, cả agglutinogens và agglutinin trong máu đều được xác định đồng thời, điều này giúp đưa ra các đặc điểm nhóm đầy đủ nhất của máu được xét nghiệm.

Khi sử dụng phương pháp thứ nhất và thứ ba, 2 loạt huyết thanh được lấy (kiểm soát huyết thanh) để tránh thu được kết quả sai.

Xác định nhóm máu bằng huyết thanh chuẩn.

Những giọt lớn huyết thanh ngưng kết hồng cầu tiêu chuẩn của 3 nhóm đầu tiên trong 2 sê-ri được nhỏ lên đĩa, đĩa, viên thuốc có bề mặt thấm ướt màu trắng dưới ký hiệu của 3 nhóm máu đầu tiên do thợ thủy tinh viết. Mỗi huyết thanh được lấy bằng một pipet riêng. Tổng cộng, do đó, thu được 6 giọt huyết thanh (3 giọt thành 2 hàng).

Bên cạnh giọt huyết thanh, nhỏ một giọt máu thử nghiệm (một giọt máu phải nhỏ hơn 5-10 lần so với một giọt huyết thanh).

Với một thanh thủy tinh khô, sạch, trộn các giọt máu với huyết thanh sao cho hỗn hợp chuyển sang màu đỏ đồng nhất. Một thanh thủy tinh riêng biệt được sử dụng cho mỗi giọt. Bạn cũng có thể sử dụng các góc của lam kính để trộn.

Sau khi trộn các giọt, đĩa được lắc trong 2-3 phút, sau đó để yên trong 2 phút. nghỉ và lắc lại, quan sát diễn biến của phản ứng. Thời gian phản ứng phải ít nhất là 5 phút.

Sau 3 phút nhỏ từng giọt, thêm một giọt nhỏ dung dịch natri clorua đẳng trương trong khi lắc từ từ đĩa (đĩa, viên).

Tính đến kết quả thu được sau 5 phút.

Giải thích kết quả.

Phản ứng ngưng kết hồng cầu có thể dương tính hoặc âm tính.

Với phản ứng dương tính, sau khi trộn máu xét nghiệm với huyết thanh, các mảng nhỏ của chất ngưng kết được hình thành, kết hợp với nhau tạo thành các mảng lớn có thể nhìn thấy bằng mắt thường. Trong trường hợp này, huyết thanh trở nên không màu hoặc gần như không màu.

Trong trường hợp phản ứng âm tính, hỗn hợp huyết thanh và máu vẫn có màu đỏ đồng nhất trong toàn bộ thời gian quan sát và không phát hiện thấy chất kết tụ trong đó.

Điều kiện tiên quyết để giải thích chính xác nghiên cứu là sự trùng hợp về kết quả của phản ứng với huyết thanh của cùng một nhóm thuộc các chuỗi khác nhau.

Khi tiến hành nghiên cứu được mô tả, có thể có 4 kết hợp kết quả tích cực và tiêu cực:

Trong tất cả các giọt, hỗn hợp hồng cầu của máu được xét nghiệm và huyết thanh tiêu chuẩn có màu đỏ đồng nhất và không phát hiện thấy hiện tượng ngưng kết ở bất kỳ đâu, tức là phản ứng ngưng kết âm tính ở cả 6 giọt. Điều này cho thấy không có agglutinogens α và β trong hồng cầu của máu được xét nghiệm, tức là - về việc nó thuộc nhóm O(I).

Nếu phản ứng ngưng kết xảy ra khi máu xét nghiệm được trộn với huyết thanh nhóm O (I) và B (III), điều đó có nghĩa là hồng cầu của máu xét nghiệm có chứa agglutinogen α, tức là nó thuộc nhóm A(II).

Trong trường hợp ngưng kết hồng cầu của máu được xét nghiệm với huyết thanh tiêu chuẩn của nhóm O (I) và A (II), có thể lập luận rằng agglutinogen β có trên màng hồng cầu, tức là máu thuộc nhóm B(III).

Nếu ngưng kết xảy ra trong tất cả các giọt, điều này có thể cho thấy sự hiện diện của agglutinogens α và β trong hồng cầu của máu được thử nghiệm, nhưng điều này chỉ có thể được xác nhận bằng cách loại trừ ngưng kết không đặc hiệu, trong những trường hợp như vậy, một nghiên cứu kiểm soát bắt buộc được thực hiện với nhóm IV huyết thanh. Nếu đồng thời phản ứng ngưng kết không phát triển, thì có thể an toàn từ chối phản ứng ngưng kết không đặc hiệu trong thí nghiệm trước và chuyển máu thử nghiệm sang nhóm AB (IV).

Xác định nhóm máu với sự trợ giúp của tsoliklons.

Việc sử dụng coliclones, cũng như việc sử dụng huyết thanh đa dòng, giúp xác định nhóm máu theo hệ thống AB0, do phát hiện các chất ngưng kết hồng cầu trong phản ứng ngưng kết hồng cầu trực tiếp.

Các soliclone chống A, chống B và chống AB là các kháng thể đơn dòng loại M được tạo ra bởi các tế bào lai ở chuột.

1) Các giọt lớn tsolonc anti-A, anti-B và anti-AB được nhỏ lên mặt phẳng bằng các pipet riêng biệt dưới các dòng chữ thích hợp.

2) Nhỏ các giọt máu thử nhỏ hơn 10 lần bên cạnh các giọt thuốc thử (một giọt máu bên cạnh mỗi giọt thuốc thử).

3) Máu được trộn với thuốc thử bằng các đũa thủy tinh riêng biệt.

4) Đĩa hoặc máy tính bảng được lắc trong 3 phút.

5) Tính đến phản ứng.

Giải thích kết quả.

Có thể thu được 4 phương án cho kết quả nghiên cứu:

1) Nếu phản ứng ngưng kết không phát triển với coclones anti-A, anti-B và anti-AB, thì máu xét nghiệm nên được chỉ định vào nhóm 0 (I), vì hồng cầu của nó không chứa agglutinogens A và B.

2) Nếu phản ứng ngưng kết được ghi nhận sau khi trộn một giọt máu thử nghiệm với thuốc thử chống A và chống AB, điều đó có nghĩa là hồng cầu có chứa chất ngưng kết A và máu thử nghiệm nên được chỉ định vào nhóm A (II). đồng thời không ngưng kết với anti-B coliclone.

3) Nếu quan sát thấy phản ứng ngưng kết với coliclone chống B và anti-AB, nhưng không có phản ứng ngưng kết với coliclone chống A, thì máu được nghiên cứu thuộc nhóm B (III), vì hồng cầu của nó có chứa agglutinogen B.

4) Nếu quan sát thấy phản ứng ngưng kết dương tính ở cả 3 giọt, trong đó thuốc thử được trộn với các giọt máu xét nghiệm, hồng cầu của máu xét nghiệm có chứa chất ngưng kết A và B, có nghĩa là máu thuộc nhóm AB (IV) nhóm. Nhưng đối với một tuyên bố hợp lý về thực tế này, cần phải loại trừ một phản ứng không đặc hiệu tự phát. Để làm điều này, trộn một giọt máu thử nghiệm với một giọt dung dịch natri clorua đẳng trương trên một mặt phẳng. Trong trường hợp không có hiện tượng ngưng kết trong nghiên cứu đối chứng, máu được nghiên cứu có thể tự tin được chỉ định vào nhóm AB (IV).

Xác định liên kết nhóm của máu theo cách chéo.

Phương pháp xác định nhóm máu này liên quan đến việc xác định đồng thời cả agglutinogen trong hồng cầu của máu được nghiên cứu và agglutinin có trong huyết tương hoặc huyết thanh của nó. Cả huyết thanh ngưng kết hamagglutin tiêu chuẩn và hồng cầu tiêu chuẩn với liên kết nhóm đã biết đều được sử dụng làm chất chẩn đoán.

1) Nhỏ giọt lớn huyết thanh ngưng kết hồng cầu tiêu chuẩn của 3 nhóm đầu tiên dưới các vạch đánh dấu sẵn trên đĩa có bề mặt thấm ướt màu trắng thành hai dãy. Các giọt huyết thanh phải có thể tích ít nhất là 0,1 ml. Do đó, thu được 6 giọt, được sắp xếp thành 2 hàng.

2) Nhỏ giọt (0,01 ml) huyền phù hồng cầu tiêu chuẩn của 3 nhóm đầu tiên vào phần dưới của tấm, cũng theo chỉ định thích hợp.

3) Từ ống chứa máu xét nghiệm đã ly tâm, huyết thanh (huyết tương) được lấy ra bằng pipet và những giọt huyết tương (huyết thanh) lớn với thể tích 0,1 ml được trộn với hồng cầu tiêu chuẩn.

Với cùng một pipet, nhỏ (0,01 ml) giọt cặn hồng cầu từ máu thử nghiệm được nhỏ bên cạnh các giọt huyết thanh ngưng kết hồng cầu tiêu chuẩn.

4) Các giọt, trong đó hồng cầu của máu xét nghiệm với huyết thanh tiêu chuẩn được trộn lẫn và huyết tương của máu xét nghiệm với hồng cầu tiêu chuẩn, được trộn bằng các que thủy tinh riêng biệt, đĩa được lắc, sau đó để yên trong 1-2 phút và lắc nữa. Quan sát phản ứng đang phát triển trong ít nhất 5 phút.

5) Sau 3 phút, thêm một giọt nước muối vào tất cả các giọt, lắc lại đĩa để trộn thuốc thử tốt hơn và tính đến kết quả sau 5 phút.

Giải thích kết quả.

Việc giải thích các kết quả liên quan đến việc so sánh kết quả tương tác của hồng cầu tiêu chuẩn với huyết tương của máu được xét nghiệm và huyết thanh ngưng kết hồng cầu tiêu chuẩn với hồng cầu của máu, phải thiết lập liên kết nhóm. 4 kết hợp là có thể:

1) Khi tương tác với huyết thanh hồng cầu tiêu chuẩn của máu được xét nghiệm, hiện tượng ngưng kết không phát triển ở bất kỳ mẫu nào. Điều này cho thấy trong hồng cầu không có chất ngưng kết A và B. Khi trộn hồng cầu chuẩn với huyết tương của máu xét nghiệm, không có hiện tượng ngưng kết chỉ với hồng cầu nhóm 0 (I), nhưng với hồng cầu nhóm A (II) và nhóm B(III). Điều thứ hai xác nhận rằng máu được thử nghiệm thuộc nhóm 0(I), vì cho thấy sự hiện diện của agglutinin alpha và beta trong huyết thanh của cô ấy.

2) Khi hồng cầu của máu xét nghiệm tương tác với huyết thanh chuẩn, hiện tượng ngưng kết xảy ra với huyết thanh nhóm 0 (I) và B (III) trong trường hợp không có phản ứng ngưng kết miễn dịch của hồng cầu trong một giọt huyết thanh nhóm A (II). Điều này cho thấy sự hiện diện của agglutinogen A trong hồng cầu của máu được xét nghiệm. Điều này khẳng định rằng máu được xét nghiệm thuộc nhóm A(II), vì chỉ ra sự hiện diện của agglutinin beta trong huyết thanh.

3) Với phản ứng ngưng kết dương tính với huyết thanh chuẩn của các nhóm 0 (I) và A (II), sự hiện diện của agglutinogen B trong hồng cầu của máu được xét nghiệm được xác định chắc chắn, tức là nó thuộc nhóm B(III) được khẳng định. Khi trộn huyết thanh (huyết tương) của máu xét nghiệm với hồng cầu tiêu chuẩn, phản ứng ngưng kết âm tính với hồng cầu của nhóm 0 (I) và B (III), nhưng dương tính với hồng cầu của nhóm A (II). Do đó, sự hiện diện của agglutinin alpha trong huyết thanh của máu xét nghiệm được phát hiện, điều này khẳng định rằng máu xét nghiệm thuộc nhóm B (III).

4) Khi trộn hồng cầu của máu xét nghiệm với huyết thanh chuẩn, phản ứng ngưng kết xảy ra ở cả 6 giọt, trong đó hồng cầu nghiên cứu được trộn với huyết thanh của 3 nhóm đầu tiên trong 2 chuỗi. Trong một nghiên cứu kiểm soát với huyết thanh của nhóm AB (IV), phản ứng ngưng kết hóa ra là âm tính, điều này cho phép chúng ta nói về sự thuộc về nhóm AB (IV) của máu được thử nghiệm. Nghiên cứu kết quả tương tác giữa huyết thanh (huyết tương) của máu xét nghiệm với hồng cầu tiêu chuẩn trong mọi trường hợp sẽ cho thấy không có hiện tượng ngưng kết, điều này cho thấy không có agglutinin tự nhiên chống lại agglutinogens A và B trong huyết tương của máu xét nghiệm. , I E. khẳng định nó thuộc nhóm AB(IV).

Xác định liên kết Rh của máu

Hiện nay, có một số cách xác định nhóm máu Rh (cho biết có hay không có kháng nguyên Rh 0 D trong hồng cầu. Cần lưu ý rằng yếu tố Rh D (Rh 0 D) đóng vai trò lớn nhất trong truyền máu nên các xét nghiệm liên kết Rh thường được sử dụng xác định loại kháng nguyên Rh này.

Xác định thuộc Rh với sự trợ giúp của anti-D-Super tsoliklon.

Nguyên tắc hoạt động của thuốc này là kháng thể đơn dòng toàn phần kháng Rhesus thuộc lớp Ig M.

1. Xác định liên kết Rh trên mặt phẳng.

Nhỏ 1 giọt Zoliclone Anti-D-Cynep lên bề mặt có thể thấm ướt.

Một giọt máu thử nghiệm hoặc huyền phù hồng cầu nhỏ hơn 5-10 lần được đặt gần đó.

Máu (huyền phù hồng cầu) được trộn với thuốc thử.

Sau 20-30 giây sau khi trộn, đĩa được lắc nhẹ trong 3 phút.

Xem xét kết quả bằng cách kiểm tra bằng mắt thường.

Giải thích kết quả.

Sự xuất hiện của hiện tượng ngưng kết khi máu xét nghiệm được trộn với thuốc thử cho thấy hồng cầu trong máu có chứa kháng nguyên Rh 0 D, tức là là Rh dương tính. Trong trường hợp không có hiện tượng ngưng kết, máu xét nghiệm được coi là Rh âm tính.

Xác định yếu tố Rh Rh 0 (D) bằng phản ứng kết tụ sử dụng gelatin.

Trong 2 ống nghiệm, thêm 1 giọt hỗn dịch hồng cầu đã nghiên cứu và 2 giọt dung dịch gelatin 10% được đun nóng đến 46-48 độ để hóa lỏng.

Trong một trong các ống nghiệm, thêm 2 giọt huyết thanh chống Rhesus đặc hiệu theo nhóm (tức là thuộc cùng nhóm ABO với hồng cầu được nghiên cứu). Huyết thanh không được thêm vào ống khác (dùng để kiểm soát tính đặc hiệu của ngưng kết)

Song song, theo cách tương tự, các hồng cầu Rh dương tính và Rh âm tính tiêu chuẩn được kiểm tra trong các ống có dán nhãn riêng biệt (chúng được trộn với huyết thanh chống Rh và dung dịch gelatin, như đã mô tả trong các đoạn trước).

Nội dung của các ống được trộn lẫn và các ống được đặt trong nồi cách thủy ở nhiệt độ 46-48 độ trong 15 phút hoặc trong máy điều nhiệt ở cùng nhiệt độ trong 30 phút.

Sau thời gian quy định, các ống được lấy ra khỏi bộ điều nhiệt (tắm nước) và thêm 5-8 ml nước muối vào mỗi ống, sau đó trộn kỹ lượng chứa trong các ống.

Đánh giá kết quả bằng cách quan sát các ống dưới ánh sáng truyền qua bằng mắt thường hoặc qua kính lúp có độ phóng đại 2-5 lần.

Giải thích kết quả.

Với kết quả dương tính (hồng cầu được nghiên cứu là Rh dương tính và cho phản ứng ngưng kết với huyết thanh chống Rh), các chất ngưng kết có thể nhìn thấy rõ trên nền của một chất lỏng gần như đổi màu. Nếu kết quả âm tính, chất lỏng trong ống nghiệm có huyền phù hồng cầu được thử nghiệm có màu đỏ hoặc hồng đồng nhất và không phát hiện thấy các mảnh kết tụ. Kết quả được tính là đúng khi có hiện tượng ngưng kết trong thí nghiệm song song với hồng cầu Rh dương chuẩn và không có hiện tượng ngưng kết trong thí nghiệm với hồng cầu Rh âm tính chuẩn, cũng như trong ống nghiệm chỉ chứa hồng cầu Rh âm tính được nghiên cứu. hồng cầu và gelatin (kiểm soát độ đặc hiệu của phản ứng).

Kết quả dương tính cho thấy hồng cầu của máu được xét nghiệm có chứa kháng nguyên Rh (tức là chúng dương tính với Rh) và kết quả âm tính cho thấy hồng cầu đang được nghiên cứu không chứa kháng nguyên Rh, tức là là Rh âm tính.

Phép cộng. Đối với nghiên cứu, có thể sử dụng cả máu tự nhiên và máu trộn với chất bảo quản, nhưng trong trường hợp sau, chất bảo quản phải được rửa bằng một thể tích gấp 10 lần dung dịch natri clorua đẳng trương. Ngoài ra, trong mỗi trường hợp xác định liên kết Rh bằng phương pháp này, nên sử dụng huyết thanh kháng Rh đặc hiệu theo nhóm của 2 chuỗi (kiểm soát huyết thanh).

Xác định liên kết Rh bằng thuốc thử phổ quát chống Rh 0 (D).

Thuốc thử phổ quát chống Rhesus là huyết thanh người chứa kháng thể chống Rhesus, nhưng thiếu kháng thể alpha và beta, đó là lý do tại sao nó có thể được sử dụng để xác định máu Rh thuộc bất kỳ nhóm nào trong hệ thống ABO. Để đảm bảo phản ứng diễn ra, dung dịch polyglucin 33% hoặc dung dịch albumin 20% được thêm vào.

Nhỏ 1 giọt máu thử nghiệm hoặc hỗn dịch hồng cầu vào ống nghiệm hình nón.

Thêm 2 giọt thuốc thử chống Rhesus phổ quát và trộn với máu cần xét nghiệm.

Nghiêng ống sao cho lượng chứa trong ống lan ra dọc theo thành ống và từ từ xoay ống quanh trục thẳng đứng để hồng cầu tiếp xúc tốt hơn với thuốc thử trong 5 phút.

Sau 5 phút, thêm 2-3 ml dung dịch natri clorid đẳng trương và trộn (không lắc) lượng chứa trong ống.

Kết quả được tính đến bằng cách kiểm tra lượng chứa trong ống nghiệm dưới ánh sáng truyền qua bằng mắt thường.

Giải thích kết quả.

Khi có chất kết tụ và làm sạch chất lỏng trong ống nghiệm, hồng cầu được nghiên cứu có chứa kháng nguyên Rh 0 (D) và máu được xét nghiệm là Rh dương tính. Trong trường hợp không có chất kết tụ và màu hồng của chất lỏng, tạo ra màu xà cừ khi lắc ống, máu xét nghiệm là Rh âm tính.

Ý nghĩa và phương pháp xác định khả năng tương thích cá nhân (AB0) và khả năng tương thích Rh. tương thích sinh học. Trách nhiệm của Bác sĩ Truyền máu.

Các xét nghiệm về khả năng tương thích cá nhân của máu của người cho và người nhận.

Khi tiến hành các xét nghiệm về khả năng tương thích của từng cá nhân, người ta xác định xem có kháng thể nào trong huyết tương (huyết thanh) của người nhận chống lại hồng cầu của người cho, có khả năng gây ngưng kết hồng cầu trong lòng mạch của người nhận, sau đó là tan máu. Vì các kháng thể có trong huyết tương của máu người hiến bị pha loãng trong quá trình truyền với một lượng máu lớn hơn đáng kể của người nhận với sự giảm hiệu giá của chúng, nên mối quan hệ ngược lại (nghĩa là kháng thể của người hiến đối với các kháng nguyên hồng cầu của người nhận) trong truyền máu không có ý nghĩa lâm sàng .

Xét nghiệm máu của người cho và người nhận tương thích trên máy bay ở nhiệt độ phòng.

Một giọt lớn (2-3 giọt lấy bằng pipet) huyết thanh hoặc huyết tương của người nhận được nhỏ lên một tấm trắng có bề mặt có thể thấm ướt.

Một giọt máu của người hiến tặng nhỏ hơn 10 lần được thêm vào đó.

Máu của người cho được trộn với huyết tương (huyết thanh) của người nhận và đĩa được lắc trong 1-2 phút. Sau đó để yên trong 1-2 phút.

5 phút sau khi bắt đầu phản ứng (sau khi trộn các giọt máu và huyết tương), phản ứng được tính đến sau khi thêm một giọt nước muối vào hỗn hợp thuốc thử (máu và huyết tương).

Giải thích kết quả.

Tấm mô phỏng những gì có thể xảy ra trong lòng mạch của người nhận. Nếu các mảnh chất ngưng kết được hình thành và hỗn hợp máu của người cho và huyết tương của người nhận (huyết thanh) trở nên nhẹ hơn, thì máu của người cho này không thể truyền cho người nhận này, bởi vì huyết tương của người nhận chứa các kháng thể chống lại các kháng nguyên hồng cầu của máu người cho. Nếu hỗn hợp máu và huyết tương vẫn có màu đỏ và không phát hiện ra chất kết tụ, điều này cho thấy không có kháng thể hoàn chỉnh trong huyết tương của người nhận có thể gây ngưng kết miễn dịch hồng cầu của máu người hiến. Do đó, máu như vậy có thể được truyền cho người hiến tặng đặc biệt này mà chúng tôi đã thao tác huyết tương của họ.

Xét nghiệm khả năng tương thích giữa máu của người cho và người nhận bằng dung dịch polyglucin 33% (xét nghiệm khả năng tương thích Rh).

Một giọt lớn huyết tương (huyết thanh) của người nhận (2-4 giọt lấy bằng pipet) được đặt trong ống nghiệm.

Thêm một giọt máu của người hiến tặng (tỷ lệ máu và huyết tương 1:10)

Một giọt dung dịch polyglucin 33% được thêm vào hỗn hợp thuốc thử thu được.

Nội dung của ống được trộn kỹ, nghiêng ống để nội dung lan rộng trên thành ống và quay chậm quanh trục thẳng đứng trong 5 phút, đảm bảo các phần tử của nội dung trong ống tiếp xúc hoàn toàn nhất với nhau .

Sau 5 phút, 3-4 ml dung dịch natri clorua đẳng trương được thêm vào ống nghiệm và trộn đều mà không lắc.

Kết quả được tính đến bằng cách kiểm tra lượng chứa trong ống nghiệm bằng mắt thường hoặc dưới kính lúp có độ phóng đại từ 2-5 lần.

Giải thích kết quả.

Với sự xuất hiện của các mảnh kết tụ và làm rõ chất lỏng trong ống nghiệm, máu của người cho không tương thích với máu của người nhận này. Nếu chất lỏng trong ống nghiệm có màu đỏ đều và không phát hiện chất kết tụ, có thể kết luận rằng huyết tương của người nhận không có kháng thể không hoàn chỉnh chống lại các kháng nguyên của hồng cầu của người cho, và do đó, máu của người cho này có thể được truyền cho người nhận này.

Kiểm tra khả năng tương thích bằng dung dịch gelatin 10% (kiểm tra khả năng tương thích Rhesus).

Nhỏ 1 giọt hồng cầu đã rửa sạch vào ống nghiệm.

2 giọt dung dịch gelatin 10% đã được làm ấm và 2 giọt huyết thanh của người nhận được thêm vào hồng cầu của người cho.

Trộn kỹ lượng chứa trong ống.

Đặt ống nghiệm trong 10 phút trong nồi cách thủy ở nhiệt độ 46-48 độ.

Sau thời gian quy định, 5-8 ml dung dịch natri clorua đẳng trương được thêm vào ống nghiệm và các chất trong ống được trộn bằng cách đảo ngược (không lắc).

Tính đến kết quả bằng mắt thường hoặc dưới kính lúp với mức tăng gấp 2-5 lần.

Giải thích kết quả.

Nếu phản ứng dương tính, tức là sự xuất hiện của các chất kết tụ trên nền của chất lỏng bị đổi màu được ghi nhận - máu của người hiến tặng này không thể được truyền cho người nhận này. Nếu chất lỏng trong ống nghiệm có màu đồng nhất và không phát hiện ra các mảnh ngưng kết thì máu của người cho tương thích với máu của người nhận và có thể truyền cho anh ta.

Thử nghiệm Coombs gián tiếp.

Trong thử nghiệm này (rất nhạy cảm), hồng cầu của người hiến tặng được rửa bằng 8-10 lần thể tích dung dịch muối đẳng trương, sau đó chúng được ly tâm và hồng cầu từ cặn được sử dụng trong phản ứng, tức là. hồng cầu nên được giải phóng càng nhiều càng tốt khỏi sự hiện diện của các thành phần tế bào và huyết tương khác.

Một giọt nhỏ (0,01 ml) hồng cầu hiến đã rửa sạch được cho vào ống nghiệm.

Thêm 3 giọt huyết thanh của người nhận và trộn kỹ lượng chứa trong ống.

Ống nghiệm được đặt trong máy điều nhiệt ở nhiệt độ 37 độ trong 45 phút.

Sau thời gian ủ quy định, đổ 8-10 lần thể tích dung dịch muối đẳng trương (natri clorua) vào ống nghiệm và trộn đều các chất trong ống nghiệm.

Ly tâm ống cho đến khi hồng cầu lắng xuống.

Quy trình rửa được lặp lại 3-4 lần, mỗi lần loại bỏ cẩn thận phần nổi phía trên.

Nhỏ 4-5 giọt dung dịch natri clorid đẳng trương vào hồng cầu đã rửa sạch để thu được huyền phù hồng cầu.

Một giọt huyền phù hồng cầu được đặt trên một tấm có bề mặt thấm ướt màu trắng.

1-2 giọt huyết thanh kháng globulin được thêm vào huyền phù hồng cầu trên máy bay và trộn bằng đũa thủy tinh.

Đĩa được lắc định kỳ trong 10 phút.

Tính đến kết quả bằng mắt thường hoặc dưới kính lúp với mức tăng gấp 2-5 lần.

Giải thích kết quả.

Nếu, sau khi thêm huyết thanh kháng globulin vào hồng cầu của người cho và ủ với huyết thanh của người nhận, các chất ngưng kết được hình thành khi làm trong chất lỏng, thì máu của người nhận chứa các kháng thể không hoàn chỉnh chống lại kháng nguyên Rh hoặc các đồng kháng nguyên khác của hồng cầu của người cho, và do đó máu của người cho không thể được truyền cho một người nhận như vậy. Nếu không có hiện tượng ngưng kết thì máu của người cho này tương thích với máu của người nhận này nên có thể truyền cho người đó.

Lỗi trong quá trình kiểm tra khả năng tương thích nhóm, liên kết Rh và cá nhân.

Trong hầu hết các trường hợp, sai sót và khó khăn trong việc tiến hành các nghiên cứu huyết thanh học miễn dịch có liên quan đến việc vi phạm kỹ thuật tiến hành. Ít thường xuyên hơn, các đặc điểm riêng lẻ của máu đang được nghiên cứu có thể được coi là lý do dẫn đến kết luận sai lầm.

Trong mọi trường hợp có kết quả nghi ngờ, cần lặp lại nghiên cứu bằng cách sử dụng thuốc thử của loạt khác, tuân thủ nghiêm ngặt các quy tắc tiến hành mẫu. Nếu lặp đi lặp lại các kết quả đáng ngờ, mẫu máu phải được gửi đến phòng thí nghiệm chuyên biệt để phân tích.

Các nguyên nhân điển hình nhất của sai sót và khó khăn trong việc tiến hành các nghiên cứu miễn dịch học.

Việc sử dụng thuốc thử chất lượng thấp (hết hạn sử dụng, vẩn đục, khô một phần, v.v.)

Vi phạm chế độ nhiệt độ của các phản ứng. Khi xác định nhóm máu theo hệ thống ABO, nhiệt độ môi trường phải nằm trong khoảng từ 15 đến 25 độ C. Ở nhiệt độ thấp hơn, sự ngưng kết không đặc hiệu do các agglutinin lạnh có thể phát triển và ở nhiệt độ cao, các agglutinin alpha và beta giảm hoạt động của chúng.

Vi phạm các tỷ lệ chính xác của phương tiện phản ứng. Khi tiến hành xét nghiệm với huyết thanh (trong trường hợp xác định liên kết nhóm theo hệ thống ABO), tỷ lệ thể tích máu và huyết thanh phải là 1:10 và khi sử dụng kháng thể đơn dòng và mẫu có chất keo (khi xác định liên kết Rh) - 2 -3:10. Mặt khác, sự ngưng kết có thể không được chú ý (do sàng lọc các chất ngưng kết bằng hồng cầu không ngưng kết hoặc do một lượng nhỏ chất ngưng kết).

· Vi phạm chế độ lấy mẫu tạm thời. Sự bắt đầu ngưng kết (đặc biệt là khi thử nghiệm với các kháng thể đơn dòng) có thể nhận thấy ngay trong những giây đầu tiên kể từ thời điểm trộn môi trường phản ứng, tuy nhiên, phản ứng phải được tính đến vào một thời điểm xác định nghiêm ngặt, bởi vì đôi khi có những loại kháng nguyên có khả năng ngưng kết yếu và cho phản ứng muộn (các loại agglutinogen A, ít thường xuyên hơn - B).

Bỏ qua nhu cầu nghiên cứu đối chứng (ví dụ, với huyết thanh nhóm AB (IV) khi xác định nhóm thuộc huyết thanh ngưng kết chuẩn hoặc mẫu có chất keo khi xác định thuộc nhóm Rh).

Tăng khả năng kết dính của hồng cầu - có thể được quan sát thấy trong các bệnh có mủ nghiêm trọng, bỏng, xơ gan, các bệnh tự miễn dịch và huyết học.

Giảm khả năng ngưng kết của hồng cầu - thường thấy trong bệnh bạch cầu.

Chimerism máu là một hiện tượng rất hiếm xảy ra ở các cặp song sinh khác trứng, trong quá trình cấy ghép tủy xương của người hiến tặng hoặc sau khi truyền (bắt buộc) một nhóm máu khác nhưng tương thích với lượng lớn.

Việc ngăn chặn các kết quả nghiên cứu sai lầm bao gồm tuân thủ nghiêm ngặt các quy tắc hiện có để xác định nhóm và Rh, các xét nghiệm tương thích với việc xem xét bắt buộc về bản chất của bệnh và tình trạng chung của người nhận.

xét nghiệm sinh học.

Xét nghiệm sinh học là bắt buộc đối với việc truyền máu của người hiến tặng, môi trường chứa hồng cầu, huyết tương, bạch cầu cô đặc, bất kể thể tích và tốc độ truyền máu.

Một xét nghiệm sinh học được thực hiện ngay trước khi truyền máu và bao gồm truyền 3 lần 10-15 ml môi trường truyền trong vòi phun hoặc ở tốc độ tối đa (2-3 ml mỗi phút) trong khoảng thời gian 5 phút, trong đó dung dịch muối được truyền để tránh kim tiêm huyết khối. Nếu trong quá trình thử nghiệm sinh học, ít nhất một trong các triệu chứng xuất hiện, cho thấy sự không tương thích của môi trường truyền máu, thì việc truyền máu của nó sẽ bị dừng lại và các biện pháp thích hợp được thực hiện. Những triệu chứng này bao gồm ớn lạnh, đau ở lưng dưới và bụng dưới, cảm giác tức và đau ở ngực, buồn nôn, nôn, nhịp tim nhanh và giảm huyết áp. Trong quá trình phẫu thuật gây mê toàn thân, các dấu hiệu không tương thích có thể là tăng chảy máu mô, hạ huyết áp, tăng nhịp tim nhanh, bài tiết nước tiểu có màu đỏ hoặc nâu (trong trường hợp đặt ống thông bàng quang).

Truyền máu. Chỉ định và chống chỉ định truyền máu. Các quy tắc truyền máu hiện đại theo các nhóm của hệ thống AB0 và hệ thống Rhesus. Phương pháp và kỹ thuật truyền máu.

Chỉ định truyền máu được xác định bởi các cơ chế hoạt động đã biết của nó:

· Thay thế.

cầm máu.

kích thích miễn dịch.

· Giải độc.

Được sử dụng cho dinh dưỡng ngoài đường tiêu hóa.

Tuy nhiên, như kinh nghiệm cho thấy, việc truyền máu rộng rãi như vậy không phải lúc nào cũng hiệu quả, hơn nữa, nó thường gây nguy hiểm: ngoài các tế bào hồng cầu, bệnh nhân còn nhận được bạch cầu, tiểu cầu, protein, kháng nguyên và kháng thể với máu.

Truyền máu nhiều lần dẫn đến miễn dịch đồng loại cho bệnh nhân.

Hiện nay, chỉ định truyền máu chính là mất máu ồ ạt cấp tính ít nhất 25-30% BCC kèm theo giảm huyết sắc tố dưới 70-80 g/l, hematocrit - dưới 25% và xuất hiện rối loạn tuần hoàn.

Ngoài ra, truyền máu được chỉ định trong trường hợp sốc và giai đoạn cuối, trong một số ít trường hợp, truyền máu thay thế cho bệnh tan máu ở trẻ sơ sinh và cho các hoạt động kèm theo mất máu nhiều.

Trong tất cả các trường hợp khác, nên sử dụng phân đoạn máu hoặc chất thay thế máu.

Chống chỉ định truyền máu.

Không có chống chỉ định tuyệt đối cho việc truyền máu.

Chống chỉ định tương đối:

Tai biến mạch máu não cấp tính.

Thiểu năng tuần hoàn II st. - Nghệ thuật III.

· Tăng huyết áp III Art.

· Suy gan, suy thận.

Lao phổi hoạt động (lan tỏa).

hen phế quản nặng.

· Các bệnh dị ứng.

Quy tắc truyền máu.

Hiện tại, việc truyền máu và các thành phần của nó chỉ được phép cho nhóm cùng tên và Rh - phụ kiện.

Trong những trường hợp đặc biệt (theo chỉ định quan trọng), khi không có máu đơn nhóm hoặc các thành phần của nó, nó được phép truyền hồng cầu nhóm O (I), Rh - âm tính, nhưng không quá 500 ml (ngoại trừ trẻ em!) .

Trong trường hợp không có huyết tương đơn nhóm, người nhận có thể được truyền huyết tương nhóm AB(IV).

Một bác sĩ thực hiện truyền máu hoặc hồng cầu của nó phải:

· Trước mỗi lần truyền phải xác định nhóm máu và Rh - của người nhận.

· Sau khi chắc chắn rằng máu của người cho phù hợp, và sau khi nạp đầy hệ thống, xác định nhóm máu và nhóm Rh của người cho, phối hợp với nhãn trên haemocon.

· Thử nghiệm về sự tương thích cá nhân của máu của người nhận và người cho.

Kiểm tra khả năng tương thích Rh.

· Tiến hành thử nghiệm tương thích sinh học.

Phần máu còn lại (10 - 15 ml) trong hemocon sau khi truyền máu được bảo quản trong tủ lạnh trong 48 giờ.

Trong vòng 3 giờ sau khi kết thúc truyền máu, nhiệt độ, mạch và huyết áp của bệnh nhân được đo. Sáng hôm sau, xét nghiệm máu và nước tiểu được thực hiện.

Mỗi lần truyền máu, các phân đoạn của nó, cũng như các chất thay thế máu đều được ghi vào danh sách truyền máu, nằm trong bệnh sử của bệnh nhân.

Phương pháp và kỹ thuật truyền máu:

Truyền trực tiếp. Máu được truyền trực tiếp từ tĩnh mạch của người cho vào tĩnh mạch của người nhận bằng thiết bị mà không sử dụng chất bảo quản.

Do nguy cơ nhiễm trùng của người hiến tặng, nó hiện không được sử dụng.

Truyền gián tiếp. Máu của người hiến tặng được bảo quản trong hemocon hoặc ống tiêm và bảo quản trong tủ lạnh ở nhiệt độ t 0 + 4 0 C.

Nếu cần thiết, nó được sử dụng để truyền máu mà không cần sưởi ấm đặc biệt. Truyền máu gián tiếp và các phần của nó được sử dụng rất rộng rãi.

Truyền lại máu: truyền máu của bệnh nhân, đổ vào các khoang thanh mạc (ổ bụng, màng phổi), vết thương kín hoặc trong khi phẫu thuật. Máu được lấy bằng một thiết bị đặc biệt hoặc trong trường hợp không có thiết bị đó, trong trường hợp khẩn cấp, máu được lọc qua 8 lớp gạc, chất bảo quản được thêm vào và truyền ngay vào tĩnh mạch.

Phương pháp này rất hiệu quả.

Chống chỉ định: tổn thương các cơ quan rỗng, máu trong khoang huyết thanh hơn 12 giờ, tan máu.

Truyền máu tự động. Nó được sử dụng trong phẫu thuật tự chọn, khi một vài ngày trước khi phẫu thuật, 400-500 ml máu được lấy từ tĩnh mạch của bệnh nhân, chất bảo quản được thêm vào, sau đó haemocon được bảo quản trong tủ lạnh và trong quá trình phẫu thuật, máu của chính bệnh nhân được truyền.

Phương pháp này rất hứa hẹn.

Chống chỉ định: thiếu máu ban đầu ở bệnh nhân.

Truyền máu trao đổi - loại bỏ một phần hoặc toàn bộ máu khỏi dòng máu đồng thời thay thế cùng một lượng máu của người hiến tặng.

Chỉ định: vàng da tán huyết trẻ sơ sinh, sốc truyền máu, ngộ độc nặng. Đồng thời, máu được lấy ra và truyền đồng thời với tốc độ 1000 ml trong 15-20 phút.

Truyền máu trao đổi hiếm khi được sử dụng.

Các cách lấy máu:

Hiện nay, truyền máu tĩnh mạch chủ yếu được sử dụng.

Sau khi kiểm tra tính tương thích, máu thường được truyền vào tĩnh mạch hình trụ bằng cách chọc thủng nó, ít thường xuyên hơn thông qua một ống thông đặc biệt được đưa vào tĩnh mạch. Nếu cần truyền một lượng lớn phương tiện truyền máu, một ống thông vĩnh viễn được sử dụng, được đặt vào tĩnh mạch trung tâm (thường ở dưới đòn).

Thông thường, truyền nhỏ giọt được sử dụng với tốc độ 40 - 60 giọt mỗi phút.

Nếu cần thay thế BCC khẩn cấp, có thể sử dụng phương pháp truyền máu phản lực tĩnh mạch.

Tiêm máu nội động mạch.

Chỉ định: sốc giai đoạn III-IV, trạng thái cuối.

Máu được bơm vào động mạch ngoại vi, nơi đã được bộc lộ trước đó, dưới áp suất 200 - 220 mm Hg. Nghệ thuật. với tốc độ 200 ml trong 1,5 - 2 phút. Máu được bơm dưới áp lực sẽ kích thích các thụ thể mạch và đảm bảo phục hồi lưu lượng máu mạch vành.

Tiêm máu vào động mạch, trong tim rất hiếm khi được thực hiện, chỉ trong thực hành hồi sức và trong các ca phẫu thuật trên ngực.

Truyền máu trong xương.

Hiện tại, nó thực tế không được sử dụng. Nó được sử dụng cho các vết bỏng rộng, khi không có tĩnh mạch ngoại vi. Truyền máu được thực hiện vào xương ức, xương chậu, xương gót với tốc độ từ 5 đến 30 giọt mỗi phút.

Ngoài các biến chứng liên quan trực tiếp đến truyền máu, sự phát triển của viêm tủy xương là có thể.