До методів остаточної зупинки кровотеч відносяться. Методи остаточної зупинки кровотеч

Фізичні методи зупинки кровотечі

Фізичні методи називають термічними, оскільки вони засновані на застосуванні низької або високої температури.

ВПЛИВ НИЗЬКОЇ ТЕМПЕРАТУРИ

Механізм гемостатичного ефекту гіпотермії – спазм кровоносних судин, уповільнення кровотоку та тромбоз судин.

Місцева гіпотермія

Для профілактики кровотечі та утворення гематом у ранньому післяопераційному періоді на рану на 1-2 години укладають міхур із льодом. Такий же метод може бути застосований при носовій кровотечі (бульбашка з льодом на область перенісся), при шлунковій кровотечі (міхур з льодом на епігастральну область).

При шлунковій кровотечі можливе також введення холодних (+4°С) розчинів у шлунок через зонд (зазвичай при цьому використовують хімічні та біологічні гемостатичні засоби).

Кріохірургія

Кріохірургія – спеціальна область хірургії. Тут використовують дуже низькі температури. Локальне заморожування використовують при операціях на мозку, печінці, лікуванні судинних пухлин.

ВПЛИВ ВИСОКОЇ ТЕМПЕРАТУРИ

Механізм гемостатичного ефекту високої температури – коагуляція білка судинної стінки, прискорення зсідання крові.

Використання гарячих розчинів

Спосіб може бути застосований під час операції. Наприклад, при дифузній кровотечі з рани, при паренхіматозній кровотечі з печінки, ложі жовчного міхура і т. д. в рану вводять серветку з гарячим фізіологічним розчином і тримають 5-7 хвилин, після видалення серветки контролюють надійність гемостазу.

Діатермокоагуляція

Недоліки методу електрокоагуляції:незастосовний на великих судинах, при неправильній надмірній коагуляції виникають великі некрози, що може ускладнювати подальше загоєння рани.

Метод може застосовуватися при кровотечі з внутрішніх органів (коагуляція судини, що кровоточить в слизовій оболонці шлунка через фіброгастроскоп) і т. д. Електрокоагуляція може використовуватися і для роз'єднання тканин з одночасною коагуляцією дрібних судин (інструмент - електроніж), що значно полегшує проведення низки операцій, так як виконання розрізу сутнісно не супроводжується кровотечею.

Виходячи з міркувань антибластики, електроніж широко застосовують у онкологічній практиці.

Лазерна фотокоагуляція, плазмовий скальпель

Способи відносяться до нових технологій у хірургії. Вони засновані на тих же принципах (створення локального коагуляційного некрозу), що і діатермокоагуляція, але дозволяють більш дозовано та м'яко зупиняти кровотечу. Це особливо важливо при паренхіматозних кровотечах.

Можливе використання методу для роз'єднання тканин (плазмовий скальпель). Лазерна фотокоагуляція та плазмовий скальпель високоефективні та підвищують можливості традиційної та ендоскопічної хірургії.

3.3.Хімічні методи остаточної зупинки кровотечі

Хімічні методи зупинки кровотечізастосовуються тільки при кровотечах з дрібних судин, паренхіматозному та капілярному, оскільки кровотеча із середнього або великого калібру вени і тим більше артерії може бути зупинена тільки механічно.

За способом застосування всі хімічні методи поділяються на місцеві та загальні (або резорбтивні дії).

Місцеві гемостатичні засобизастосовуються для зупинки кровотечі в рані, шлунку, інших слизових оболонках.

Основні препарати:

1. Перекис водню. Застосовують при кровотечах у рані, що діє за рахунок прискорення тромбоутворення.

2. Судинозвужувальні засоби (адреналін). Використовують для профілактики кровотечі при екстракції зуба, вводять у підслизовий шар при шлунковій кровотечі та ін.

3. Інгібітори фібринолізу – епсілон-амінокапронованя кислота. Вводиться у шлунок при шлунковій кровотечі.

4. Препарати желатину (геласпон). Уявляють із себе губки зі спіненого желатину. Прискорюють гемостаз, тому що при контакті з желатином ушкоджуються тромбоцити та звільняються фактори, що прискорюють утворення тромбу. Крім того, мають тампонуючий ефект. Використовують при зупинці кровотечі в операційній або довільній рані.

5. Віск. Використовується ефект, що тампонує. Воском "заліплюють" пошкоджені плоскі кістки черепа (зокрема, при операції трепанації черепа).

6. Карбазохром. Застосовується при капілярних та паренхіматозних кровотечах. Зменшує проникність судин, нормалізує мікроциркуляцію. Змочені розчином серветки прикладають до ранової поверхні.

Гемостатичні речовини резорбтивної діївводяться в організм хворого, викликаючи прискорення процесу тромбування у пошкоджених судинах.

Основні препарати:

1. Інгібітори фібринолізу (епсілон-амінокапронова кислота).

2. Хлорид кальцію - використовується при гіпокальціємії, так як іони кальцію - один з факторів системи згортання крові.

3. Речовини, що прискорюють утворення тромбопластину – діцинон, етамзилат (крім того, нормалізують проникність судинної стінки та мікроциркуляцію).

4. Речовини специфічної дії. Наприклад, використання пітуїтринапри матковій кровотечі: препарат викликає скорочення маткової мускулатури, що зменшує просвіт судин матки і таким чином сприяє зупинці кровотечі.

5. Синтетичні аналоги вітаміну К (вікасол). Сприяють синтезу протромбіну. Особливо показаний у разі порушення функції печінки (наприклад, при холемічних кровотечах).

6. Речовини, що нормалізують проникність судинної стінки (аскорбінова кислота, рутин, карбазохром).

Остаточна зупинка кровотечі може бути механічною, фізичною, хімічною та біологічною.

Механічні способи зупинки кровотечі виконуються у перев'язувальній або операційній при хірургічній обробці рани або під час операції та полягають у наступному:

а) перетискання судини затискачем з наступним накладенням лігатури;

б) у разі небезпеки сповзання лігатури використовують метод обколювання судини, тобто перед зав'язуванням нитку хірургічною голкою проводять через стінку судини або навколишню тканину і після цього обводять навколо судини і зав'язують;

в) перев'язка судини протягом.

При дифузних кровотечах з рани, коли неможливо зупинити кровотечу навіть прошивання тканин у масі, використовують метод перев'язки судини, що живить дану область, протягом. Для цього посудину окремим розрізом вище за поранення оголюють і перев'язують.

При травмі великих магістральних судин збереження життєздатності органу залежить від терміну ішемії. Як відомо, незворотні зміни починаються через 2-4 години після початку ішемії, тому при зупинці кровотечі з метою збереження життєздатності кінцівки (тимчасового відновлення кровопостачання) використовують метод тимчасового внутрішньосудинного шунтування. Методика проста і полягає у введенні будь-якої щільноеластичної трубки в просвіт пошкодженої артерії з фіксацією її кінців лігатурами. Такий «шунт» може функціонувати від кількох годин на добу.

Ідеальним способом зупинки кровотечі при пошкодженні великих судин є судинний шов, який відновлює безперервність судинного русла. Необхідною умовою накладання судинного шва є наявність судинних затискачів, атравматичних голок та володіння хірургом технікою судинного шва.

Існує два види судинного шва: бічний та круговий. Бічний шов використовують при крайовому пораненні судини, здійснюючи поздовжнє (якщо дозволяє величина просвіту судини) або поперечне зашивання просвіту. При крайовому дефекті артерії для його заміщення можна скористатися латкою з автовени або синтетичного матеріалу. При повній перерві або перетині артерії виділяють її кінці та двома атравматичними швами, накладеними у двох протилежних краях судини, останні зближують, шви зав'язують і використовують як трималки, краї судини зшивають безперервним обвивним швом. При значному дефекті судини його безперервність відновлюють алопротезом. При накладенні судинного шва та відсутності судинного голкотримача може бути використаний прямий затискач.

Фізичні способи зупинки кровотечі полягають у застосуванні високої та низької температури. Кровоспинна дія високої температури заснована на скорочуючому впливі її на судину, а при значних її цифрах відбувається згортання тканинних білків і крові. З цією метою використовують найчастіше ізотонічний розчин хлориду натрію, підігрітий до 45-50° С. В даний час широкого поширення набула електрокоагуляція - один електрод коагулятора у вигляді свинцевої пластини через марлеву, змочену ізотонічним розчином натрію хлориду, прокладку щільно фіксують до кінцівки, електрод вільний, і при його дотику до кровоспинного затиску відбувається коагуляція судини. У медичній практиці почав застосовуватися лазерний промінь як скальпель, що дозволяє проводити операцію безкровно. Низька температура діє аналогічно високій температурі, викликаючи залежно від величини спазм або коагуляцію тканин. З цією метою використовують лід, кристалізовану вуглекислоту (сухий лід), рідкий азот.

Хімічні методиподіляються на зовнішні та внутрішні кровоспинні засоби. В якості зовнішнього використовуються 3-5% розчин перекису водню, розчин адреналіну 1:1000 та ін. хлорид кальцію, желатин, амінокапронова кислота, гемофобін та ін.).

Біологічні способи зупинки кровотечі засновані на зовнішньому та внутрішньому застосуванні препаратів крові та її компонентів (гемостатична губка, фібринова плівка, дробове переливання малих доз крові, фібриноген, свіжа плазма).

Накладення джгута.

Стандартний джгут є гумовою стрічкою 1,5 м довжиною з ланцюжком та гачком на кінцях

Показання.Зазвичай метод застосовується при кровотечі з ран на кінцівках, хоча можливе накладання джгута в пахвинній та пахвовій ділянці, а також на шиї (при цьому судинно-нервовий пучок на непошкодженому боці захищають шиною Крамера).

Основними показаннями до накладання джгута є:

Артеріальна кровотеча із ран кінцівок;

Будь-яка масивна кровотеча з ран кінцівок.

Особливість цього способу - повне припинення кровотоку дистальніше джгута. Це забезпечує надійність зупинки кровотечі, але водночас викликає значну ішемію тканин. Крім того, джгут може здавлювати нерви та інші утворення.

Загальні правила накладання джгута:

· Перед накладенням джгута слід підняти кінцівку.

· Джгут накладають проксимальніше рани і якомога ближче до неї.

· Під джгут необхідно підкласти тканину (одяг).

· При накладенні джгута роблять 2-3 тури, рівномірно розтягуючи його, причому тури не повинні лягати один на інший.

· Після накладання джгута обов'язково вказати точний час його накладання (зазвичай під джгут кладуть аркуш паперу з відповідним записом).

· Частина тіла, де накладено джгут, має бути доступною для огляду.

Постраждалі зі джгутом транспортуються та обслуговуються насамперед. Критеріями правильно накладеного джгута є:

Зупинка кровотечі;

Припинення периферичної пульсації;

Бліда та холодна кінцівка.

Вкрай важливо те, що джгут не можна тримати більше 2 годин на нижніх кінцівках і 1,5 години на верхніх. В іншому випадку можливий розвиток некрозів на кінцівки внаслідок її тривалої ішемії.

При необхідності тривалого транспортування постраждалого джгут щогодини розпускають приблизно на 10-15 хв, замінюючи цей метод іншим тимчасовим способом зупинки кровотечі (пальцеве притискання).

Знімати джгут потрібно поступово послаблюючи його, із попереднім введенням знеболювальних засобів.

Пальцеве притискання артерій.

Це досить простий метод, який не вимагає будь-яких допоміжних предметів. Основна його перевага - можливість максимально швидкого виконання. Недолік - може ефективно застосовуватися лише протягом 10-15 хв, тобто є короткочасним.

Показання до пальцевого притискання артерій є масивна кровотеча з відповідного артеріального басейну.

Пальцеве притискання особливо важливо в екстрених ситуаціях для підготовки до застосування іншого способу гемостазу, наприклад накладання джгута.

Притискання судини, що кровоточить в рані.

Цей прийом хірурги часто застосовують у разі виникнення кровотечі під час операції. Місце пошкодження судини або посудину проксимальніше перетискають одним або декількома пальцями. Кровотеча зупиняється, рану осушують та обирають найбільш адекватний остаточний спосіб зупинки кровотечі.

Максимальне згинання кінцівки.

Метод ефективний при кровотечі зі стегна (максимальне згинання в тазостегновому суглобі), з гомілки та стопи (максимальне згинання в колінному суглобі), кисті та передпліччя (максимальне згинання у ліктьовому суглобі)

Показання до виконання максимального згинання такі самі, як і при накладенні джгута. Метод менш надійний, але в той же час менш травматичний. Максимальне згинання в ліктьовому суглобі часто використовують для зупинки кровотечі після пункції кубітальної вени (внутрішньовенні інфузії, забір крові для досліджень).

Високе становище кінцівки.

Метод вкрай простий – необхідно просто підняти пошкоджену кінцівку.

Показання для застосування - венозна або капілярна кровотеча, особливо з ран на нижніх кінцівках.

Пов'язка, що давить.

Показання.Пов'язка, що давить, застосовується при помірній кровотечі з дрібних судин, венозній або капілярній кровотечі. Зазначений спосіб – метод вибору при кровотечі з варикозно розширених вен нижніх кінцівок. Пов'язка, що давить, може бути накладена на рану з метою профілактики кровотечі в ранньому післяопераційному періоді (після флебектомії, секторальної резекції молочної залози, мастектомії та ін.).

Для цього простого способу необхідний тільки бинт і перев'язувальний матеріал.

Техніка На рану накладають кілька стерильних серветок (зверху іноді формують валик) і туго бинтують. Перед накладенням пов'язки на кінцівку необхідно надати їй високе становище. Пов'язку слід накладати від периферії до центру.

Тампонада рани.

Метод показаний при помірній кровотечі з дрібних судин, капілярній та венозній кровотечі за наявності порожнини рани. Часто застосовується на операціях. Порожнина рани туго заповнюється тампоном, який залишається на деякий час. Кровотеча зупиняється, виграється час, а потім використовується більш адекватний метод.

Накладення затиску на судину, що кровоточить.

Метод показаний під час зупинки кровотечі під час операції. При виникненні кровотечі хірург накладає на судину, що кровоточить, спеціальний кровоспинний затискач (затиск Більрота). Кровотеча зупиняється. Потім застосовують остаточний метод, найчастіше – перев'язку судини. При накладенні затиску необхідно пам'ятати, що робити це потрібно вкрай акуратно, під контролем зору, інакше в затискач, крім пошкодженого, може потрапити і магістральна судина або нерв, що призведе до несприятливих наслідків.

Тимчасове шунтування.

Застосовується при пошкодженні великих магістральних судин, переважно артерій, припинення кровотоку якими може призвести до небажаних наслідків і навіть загрожувати життю хворого.

Хірург може вставити у пошкоджені кінці судини трубку (поліетиленову, скляну) та фіксувати її двома лігатурами. Кровообіг у кінцівці збережено, кровотечі немає. Подібні тимчасові шунти функціонують протягом декількох годин і навіть кількох діб, що дозволяє виконати накладання судинного шва або протезування судини.

Способи остаточної зупинки кровотечі.

Способи остаточної зупинки кровотечі в залежності від природи застосовуваних методів поділяються на механічні, фізичні (термічні) та хімічні.

Механічні методи

Механічні способи зупинки кровотечі-найнадійніші. При пошкодженні великих судин, судин середнього калібру, артерій застосування механічних методів призводить до надійного гемостазу.

Перев'язка судини.

Розрізняють два види перев'язки судин:

Перев'язка судини у рані;

Перев'язка судини протягом.

Перев'язка судини у рані.

Перев'язувати судину в рані, безпосередньо біля місця ушкодження, безумовно, краще. Такий спосіб зупинки кровотечі порушує кровопостачання мінімального обсягу тканин.

Найчастіше на операції хірург накладає на судину кровоспинний затискач, а потім лігатуру (тимчасовий спосіб замінюється остаточним). Альтернативою лігування є кліпування судин – накладення на судину за допомогою спеціального кліпатора металевих скріпок (кліпс). Цей метод широко використовується в ендоскопічній хірургії.

Перев'язка судини протягом

Перев'язка судини протягом принципово відрізняється від перев'язки у рані. Тут йдеться про лігування досить великого, часто магістрального стовбура проксимальніше місця пошкодження. При цьому лігатура дуже надійно перекриває кровотік магістральною судиною, але кровотеча, хоча і менш серйозна, може продовжуватися за рахунок колатералеї та зворотного струму крові.

Головний недолік перев'язки судини протягом полягає в тому, що кровопостачання позбавляється набагато більшого обсягу тканин, ніж при перев'язці в рані. Такий спосіб принципово гірший і застосовується як вимушений захід.

Існує два показання до перев'язки судини протягом.

Пошкоджена судина не вдається виявити, що буває при кровотечі з великого м'язового масиву (масивна кровотеча з язика - перев'язують язичну артерію на шиї в трикутнику Пирогова; кровотеча з м'язів сідниці - перев'язують внутрішню клубову артерію тощо);

Вторинна аррозивна кровотеча з гнійної або гнильної рани (перев'язка в рані ненадійна, оскільки можлива арозія кукси судини та рецидив кровотечі, крім того, маніпуляції в гнійній рані сприятимуть прогресуванню запального процесу).

Техніка виконання відповідно до топографо-анатомічних даних оголюють і перев'язують судину протягом проксимальніше зони пошкодження.

Прошивання судини.

У тих випадках, коли кровоточивий посуд не виступає над поверхнею рани і захопити його затискачем не вдається, застосовується накладання навколо судини кисетного абоZ-подібного шва через навколишні тканини з наступним затягуванням нитки - так зване прошивання судини

Закручування, роздавлювання судин.

Метод застосовується рідко при кровотечі із дрібних вен. На вену накладають затискач, він якийсь час знаходиться на посудині, а потім знімається. Додатково можна кілька разів повернути затискач навколо осі. При цьому максимально травмується стінка судини і вона надійно тромбується.

Тампонада рани, пов'язка, що давить.

Тампонада рани і накладення пов'язки, що давить - методи тимчасової зупинки кровотечі, але вони можуть стати і остаточними. Після зняття давить (зазвичай на 2-3 добу) або видалення тампонів (зазвичай на 4-5 добу) кровотеча може зупинитися внаслідок тромбування пошкоджених судин.

Емболізація судин.

Метод відноситься до ендоваскулярної хірургії. Застосовується при кровотечі з гілок легеневих артерій, кінцевих гілок черевної аорти та ін. При цьому за методикою Сельдингера катетеризують стегнову артерію, катетер підводять до зони кровотечі, вводять контрастну речовину і, виконуючи рентгенівські етапи. Потім по катетеру до місця пошкодження підводять штучний ембол (спіраль, хімічна речовина: спирт, полістирол), що закриває просвіт судини і викликає його швидкий тромбоз.

Спосіб малотравматичний, дозволяє уникнути великого хірургічного втручання, але показання щодо нього обмежені. Крім того, потрібні спеціальне обладнання, і кваліфіковані співробітники.

Спеціальні методи боротьби із кровотечами.

До механічних методів зупинки кровотечі відносяться окремі види операцій: спленектомія при паренхіматозній кровотечі із селезінки, резекція шлунка при кровотечі з виразки або пухлини, лобектомія при легеневій кровотечі і т.д.

Одним із спеціальних механічних способів є застосування зонда-обтуратора при кровотечі з варикозно розширених вен стравоходу – досить частого ускладнення захворювань печінки, що супроводжуються синдромом портальної гіпертензії. Зазвичай використовують зонд Блекмора, з двома манжетами, нижня з яких фіксується в кардії, а верхня при роздмухуванні здавлює кровоточиві вени стравоходу.

Судинний шов та реконструкція судин.

Його застосовують при пошкодженні великих магістральних судин, припинення кровотоку якими призвело б до несприятливих життя хворого наслідків. Розрізняють ручний та механічний шов.

При накладенні ручного шва використовують атравматичний шовний матеріал, що не розсмоктується (нитки №№4/0-7/0 залежно від калібру судини).

При різному характері пошкодження судинної стінки використовують різні варіанти реконструктивного втручання на судинах: бічний шов, бічна латка, резекція з анастомозом «кінець у кінець», протезування (заміщення судини), шунтування (створення обхідного шляху крові).

При реконструкції судин як протези і шунти використовують зазвичай аутовену, аутоартерію або синтетичний матеріал. За такої судинної операції мають бути задоволені такі вимоги:

Високий ступінь герметичності;

Відсутність порушень струму крові (звужень та завихрень);

Якнайменше шовного матеріалу у просвіті судини;

Прецизійне зіставлення шарів судинної стінки.

Слід зазначити, що при цьому способі у повному обсязі зберігається кровопостачання тканин.

фізичні методи.

Застосовуються тільки при кровотечах з дрібних судин, паренхіматозному та капілярному, оскільки кровотеча з вени середнього або великого калібру і тим більше артерії може бути зупинена тільки механічно.

Вплив низької температури.

Місцева гіпотермія.

Для профілактики кровотечі та утворення гематом у ранньому післяопераційному періоді на рану на 1-2 години укладають міхур з льодом. Метод може бути застосований при носовій кровотечі (бульбашка з льодом на область перенісся), при шлунковій кровотечі (міхурка з льодом на епігастральну область).

Кріохірургія.

Вплив високої температури.

Використання гарячих розчинів

Спосіб може бути застосований під час операції. Наприклад, при дифузній кровотечі з рани, при паренхіматозній кровотечі з печінки, ложа жовчного міхура і т. д. в рану вводять серветку з гарячим фізіологічним розчином і тримають 5-7 хв, після видалення серветки контролюють надійність гемостазу.

Діатермокоагуляція.

Діатермокоагуляція є найчастіше використовуваним фізичним способом зупинки кровотечі. Метод заснований на застосуванні струмів високої частоти, що призводять до коагуляції та некрозу судинної стінки у місці контакту з наконечником приладу та утворення тромбу. Без діатермокоагуляції зараз немислима жодна серйозна операція. Вона дозволяє швидко, без залишення лігатури (стороннє тіло) зупинити кровотечу з дрібних судин і оперувати таким чином на сухій рані. Недолік методу електрокоагуляції: при надмірній коагуляції виникають великі некрози, що може ускладнювати подальше загоєння рани.

Метод може застосовуватися при кровотечі з внутрішніх органів (коагуляція судини, що кровоточить в слизовій оболонці шлунка через фіброгастроскоп) і т. д. Електрокоагуляція може використовуватися і для роз'єднання тканин з одночасною коагуляцією дрібних судин (інструмент - «електроніж»), що значно полегшує проведення ряду операцій оскільки виконання розрізу по суті не супроводжується кровотечею.

Виходячи з міркувань антибластики, електроніж широко застосовують у онкологічній практиці.

Лазерна фотокоагуляція, плазмовий скальпель.

Способи відносяться до нових технологій у хірургії. Вони засновані на тому ж принципі, що і діатермокоагуляція (створення локального коагуляційного некрозу), але дозволяють більш дозовано і м'яко зупиняти кровотечу. Це особливо важливо при паренхіматозних кровотечах.

Хімічні способи.

За способом застосування всі хімічні методи поділяються на місцеві та загальні (або резорбтивні дії).

Місцеві гемостатичні засоби.

Місцеві гемостатичні засоби застосовуються для зупинки кровотечі в рані, шлунку, інших слизових оболонках.

Перекис водню. Застосовують при кровотечах у рані, що діє за рахунок прискорення тромбоутворення.

Судинозвужувальні засоби (адреналін). Використовують для профілактики кровотечі при екстракції зуба, вводять під слизовий шар при шлунковій кровотечі та ін.

Інгібітори фібринолізу - ε-амінокапронова кислота. Вводиться у шлунок при шлунковій кровотечі.

Препарати желатину (геласпон). Є губками зі спіненого желатину. Прискорюють гемостаз, тому що при контакті з желатином ушкоджуються тромбоцити та звільняються фактори, що прискорюють утворення тромбу. Крім того, мають тампонуючий ефект. Використовують при зупинці кровотечі в операційній або довільній рані.

Віск. Використовується його ефект, що тампонує. Воском заліплюють пошкоджені плоскі кістки черепа (зокрема, під час операції трепанації черепа).

Карбазохром. Застосовується при капілярних та паренхіматозних кровотечах. Зменшує проникність судин, нормалізує мікроциркуляцію. Змочені розчином серветки прикладають до ранової поверхні.

Капрофер. Застосовують для зрошення слизової оболонки шлунка при кровотечі з ерозій гострих виразок (при ендоскопії).

Гемостатичні речовини резорбтивної дії

Гемостатичні речовини резорбтивної дії вводяться в організм хворого, спричиняючи прискорення процесу тромбування пошкоджених судин.

· Інгібітори фібринолізу (ε-амінокапронова кислота).

· Хлорид кальцію - використовується при гіпокальціємії, тому що іони

· Кальція - один з факторів системи згортання крові.

· Речовини, що прискорюють утворення тромбопластину – діцинон, етамзилат (крім того, нормалізують проникність судинної стінки та мікроциркуляцію).

· Речовини специфічної дії. Наприклад, пітуїтрин при матковій кровотечі: препарат викликає скорочення маткової мускулатури, що зменшує просвіт судин матки і таким чином сприяє зупинці кровотечі.

Механічні методи

Перев'язка судини.

Розрізняють два види перев'язки судин:

Перев'язка судини у рані;

Перев'язка судини протягом.

Перев'язка судини у рані.

Перев'язка судини протягом

Існує два показання до перев'язки судини протягом.

Прошивання судини.

У тих випадках, коли судина, що кровоточить, не виступає над поверхнею рани і захопити її затискачем не вдається, застосовується накладання навколо судини кисетного або Z-подібного шва через навколишні тканини з подальшим затягуванням нитки - так зване прошивання судини

Закручування, роздавлювання судин.

Тампонада рани, пов'язка, що давить.

Емболізація судин.

Спеціальні методи боротьби із кровотечами.

Судинний шов та реконструкція судин.

Високий ступінь герметичності;

Відсутність порушень струму крові (звужень та завихрень);

Якнайменше шовного матеріалу у просвіті судини;

Прецизійне зіставлення шарів судинної стінки.

Слід зазначити, що при цьому способі у повному обсязі зберігається кровопостачання тканин.

фізичні методи.

Вплив низької температури.

Місцева гіпотермія.

Кріохірургія.

Вплив високої температури.

Використання гарячих розчинів

Діатермокоагуляція.

Метод може застосовуватися при кровотечі з внутрішніх органів (коагуляція судини, що кровоточить в слизовій оболонці шлунка через фіброгастроскоп) і т. д. Електрокоагуляція може використовуватися і для роз'єднання тканин з одночасною коагуляцією дрібних судин (інструмент - «електроніж»), що значно полегшує проведення ряду операцій оскільки виконання розрізу по суті не супроводжується кровотечею.

Виходячи з міркувань антибластики, електроніж широко застосовують у онкологічній практиці.

Лазерна фотокоагуляція, плазмовий скальпель.

Хімічні способи.

За способом застосування всі хімічні методи поділяються на місцеві та загальні (або резорбтивні дії).

Місцеві гемостатичні засоби.

Місцеві гемостатичні засоби застосовуються для зупинки кровотечі в рані, шлунку, інших слизових оболонках.

Перекис водню. Застосовують при кровотечах у рані, що діє за рахунок прискорення тромбоутворення.

Інгібітори фібринолізу - ε-амінокапронова кислота. Вводиться у шлунок при шлунковій кровотечі.

Гемостатичні речовини резорбтивної дії

· Інгібітори фібринолізу (ε-амінокапронова кислота).

· Хлорид кальцію – використовується при гіпокальціємії, так як іони

· Кальція - один з факторів системи згортання крові.

· Речовини, що прискорюють утворення тромбопластину – діцинон, етамзілат (крім того, нормалізують проникність судинної стінки та мікроциркуляцію).

· Синтетичні аналоги вітаміну К (вікасол). Сприяють синтезу протромбіну. Показаний у разі порушення функцій печінки (наприклад, при холемічних кровотечах).

· Речовини, що нормалізують проникність судинної стінки (аскорбінова кислота, рутин, карбазохром).

Історія вчення про переливання крові. Імунологічні засади переливання крові.

В історії переливання крові виділяють чотири основні періоди.

Перший період: від давніх часів до 1628 року.

Другий період: з 1628 до 1901 року.

Третій період: з 1901 року до першого переливання крові з урахуванням групової власності (Крайль, В.Н. Шамов).

Четвертий період: від 1-го переливання крові з урахуванням групової власності донині.

У давнину у багатьох народів значного поширення набуло лікування багатьох хвороб шляхом прийому крові всередину. Панування так званого вампіризму тривало і в період середньовіччя.

Ідея омолоджування шляхом вливання крові в судини себе не виправдала. Відомий факт переливання крові татові Інокентію від двох юнаків у 1492 році.

В 1628 Гарвей описав кола кровообігу, а в 1667 Дені і Емерець у Франції перелили хворому кров ягняти, проте четверте переливання закінчилося смертю хворого. Спеціальним судовим засіданням було ухвалено рішення - застосовувати будь-яке введення крові лише після спеціального дозволу медичного факультету Паризького університету.

Проте, 1675г. Ватикан видав вердикт, що забороняє переливання крові людині, і майже півтора століття роботи були згорнуті.

В 1819 англійський лікар І. Блендель вперше перелив кров від людини до людини за допомогою спеціального апарату.

Перше успішне переливання крові у Росії 1832 року зробив Г. Вольф. При пораненнях та крововтраті переливання крові застосовували Н.І. Пирогов, І.В. Буяльський, С.П. Коломнін. У Росії її з 1832 р. остаточно 19 століття було проведено 60 переливань крові, проте, як нашій країні, і там, ці роботи мали емпіричний характер.

Науково обґрунтованими та менш небезпечними гемотрансфузії стали після того, як у 1901 році К. Ландштейнер встановив, що сироватка крові людини може склеювати (аглютинувати) еритроцити іншої людини. Цей феномен отримав назву - "феномен ізогемагглютинацій".

Ландштейнером було описано три групи крові, а 1907 р. Янський описав четверту групу крові.

Групова приналежність крові визначається наявністю в еритроцитах групоспецифічних антигенів – аглютиногенів: А, В та О, а в сироватці – антитіл: α та β. Аглютиногени - поліпептиди, що з'являються на 3-му місяці внутрішньоутробного розвитку плода. Аглютиніни сироватки знаходяться в глобулінових фракціях і максимальний титр їх віком від 5 до 20 років.

Реакція склеювання еритроцитів відбувається у тих випадках, коли відбувається зустріч однойменних аглютиногенів та аглютинінів: А та α, В та β. Причому аглютинуються еритроцити донорської крові.

Згідно з класифікацією К. Ландштейнера та Я. Янського в даний час розрізняють такі групи крові:

I група - Про (I) αβ - в еритроцитах немає аглютиногенів А і В, є аглютиноген О, але так як до нього немає антитіл, він практичного значення не має. У плазмі, сироватці цих осіб є аглютинини α і β.

II група – А (II) β – в еритроцитах є аглютиноген А, у сироватці – аглютинін β.

III група – В (III) α – в еритроцитах аглютиноген В, у сироватці аглютинін α.

IV група - АВ (IV) про - в еритроцитах є аглютиноген А і В, в сироватці немає аглютинінів.

Група крові не змінюється протягом життя.

Грунтуючись на відкритті К. Ландштейнера, 1907р. Г. Крайль зробив перше переливання крові з урахуванням групової власності. У 1919 року перше у Росії переливання крові з урахуванням груповий власності зробив В.Н. Шамов.

Запропонований 1914 р. В.А.Юревичем і Н.К.Розенгартом цитрат натрію для профілактики згортання крові дозволив розпочати дослідження з її консервування. У 1934 році блискучий вітчизняні вчені А.Н.Філатов і Н.Г.Карташевський вперше у світі здійснили поділ донорської крові на фракції, започаткувавши отримання компонентів і препаратів крові, і, визначивши новий, сучасний напрямок трансфузіології - використання для переливання окремих компонентів і фракцій крові.

В 1940 Ландштейнер і Вінер відкрили ще один антиген, що міститься в еритроцитах людини, позначивши його Rh (резус - фактор).

Резус - фактор, як виявилося, нерівномірно розподілений у представників окремих рас. Серед європейського населення цей антиген є у 85% людей (резус – позитивні) особи, а у 15% (резус – негативні особи) він відсутній. В осіб монголоїдної раси резус – негативні особи становлять лише 0,5 %.

В даний час відомі 6 основних різновидів антигенів системи резус (Rh - Hr), що становлять поліалельну систему:

Rh(D), rh | (C), rh | (E)

Hr(d), hr | (c), hr (e).

Найбільш важливим з них є антиген Rh, який має найбільшу імунну активність.

Відкриття Ландштейнера та Вінера визначило основні вимоги, необхідні при кожній гемотрансфузії: переливання з урахуванням сумісності антигенів АВ0 і Rh.

Групові системи еритроцитів. Групова система АВ0 та групова система резус. Методи визначення груп крові за системами АВ0 та резус.

Залежно від наявності в еритроцитах аглютиногенів А і В, а в сироватці відповідних ним аглютинінів α і β, всі люди розділені на чотири групи:

Група О (I) – в еритроцитах аглютиногенів немає, у сироватці аглютинини α та β.

Група А (II) – в еритроцитах аглютиноген А, у сироватці аглютинін β.

Група В (III) - в еритроцитах аглютиноген, у сироватці аглютинін α.

Група АВ (IV) – в еритроцитах аглютиногени А та В, аглютинінів у сироватці немає.

Останнім часом у системі АВ0 виявлено різновиди класичних антигенів А та В, а також інші антигени.

В основі визначення групової належності крові лежить реакція прямої гемаглютинації при кімнатній температурі, що розвивається при зустрічі однойменних аглютинінів та аглютиногенів.

Для визначення групи крові за системою АВ0 існують 3 способи:

1. із застосуванням стандартних сироваток, що містять природні аглютинини в достатньому титрі, що дозволяють встановити, які аглютиногени містяться в еритроцитах випробуваної крові;

2. із застосуванням гібридомних препаратів, що містять імунні антитіла анти-А, анти-В і анти-АВ, що також дозволяють виявити аглютиногени А і В в еритроцитах випробуваної крові;

3. за допомогою стандартних сироваток та стандартних еритроцитів (перехресний спосіб). У цьому випадку одночасно визначаються як аглютиногени, так і аглютинін крові, що дозволяє дати найбільш повну групову характеристику випробуваної крові.

При використанні першого і третього способів беруть 2 серії сироваток (контроль сироватки), щоб уникнути помилкових результатів.

Визначення групової належності крові за допомогою стандартних сироваток.

На тарілку, пластинку, планшет з білою поверхнею, що змочується під написані склографом позначення перших 3 груп крові наносять великі краплі стандартних гемагглютинирующих сироваток перших 3-х груп у 2-х серіях. Кожна сироватка береться окремою піпеткою. Усього, таким чином, виходить 6 крапель сироваток (по 3 краплі у 2 рядах).

Поряд із краплями сироваток поміщають по маленькій краплі випробуваної крові (крапля крові повинна бути в 5-10 разів менше краплі сироватки).

Чистою сухою скляною паличкою змішують краплі крові із сироваткою, щоб суміш забарвилася в рівномірний червоний колір. Для кожної краплі використовують окрему скляну паличку. Можна для змішування використовувати куточки предметного скла.

Після змішування крапель пластинку похитують 2-3 хвилини, потім залишають на 2 хв. у спокої та знову похитують, спостерігаючи за перебігом реакції. Час реакції має бути не менше ніж 5 хвилин.

Через 3 хвилини в краплі, додають по маленькій краплі ізотонічного розчину хлориду натрію при повільному похитуванні пластинки (тарілки, планшета).

Враховують отримані результати за 5 хвилин.

Трактування результатів.

Реакція гемаглютинації може бути позитивною та негативною.

При позитивній реакції після змішування випробуваної крові із сироваткою утворюються дрібні пластівці аглютинатів, які, зливаючись між собою, утворюють великі пластівці, видимі неозброєним оком. При цьому сироватка стає безбарвною або майже безбарвною.

У випадках негативної реакції суміш сироватки та крові залишається рівномірно забарвленою в червоний колір протягом усього часу спостереження, а аглютинати в ній не виявляються.

Обов'язковою умовою правильного трактування дослідження є збіг результатів реакції із сироватками однієї і тієї ж групи різних серій.

При проведенні описаного дослідження можливі 4 варіанти поєднань позитивних та негативних результатів:

В усіх краплях суміш еритроцитів випробуваної крові та стандартних сироваток забарвлена в однорідний червоний колір і ніде аглютинація не визначається, тобто. реакція аглютинації виявляється негативною у всіх 6 краплях. Це свідчить про відсутність в еритроцитах випробуваної крові аглютиногенів і β, тобто. - Про належність її до О (I) групи.

Якщо реакція аглютинації розвинулася при змішуванні випробуваної крові з сироватками Про (I) і В (III) груп, - отже, в еритроцитах випробуваної крові міститься аглютиноген α, тобто. вона належить до групи А(ІІ).

У випадках аглютинації еритроцитів випробуваної крові стандартними сироватками О(І) та А(ІІ) груп можна стверджувати, що на оболонці еритроцитів є аглютиноген β, тобто. кров відноситься до (III) групі.

Якщо аглютинація відбулася у всіх краплях, це може свідчити про наявність в еритроцитах випробуваної крові аглютиногенів α і β, але стверджувати це можна лише виключивши неспецифічну аглютинацію, для чого в таких випадках проводиться обов'язкове контрольне дослідження із сироваткою IV групи. Якщо при цьому реакція аглютинації не розвивається, можна з упевненістю заперечувати неспецифічну аглютинацію у попередньому досвіді та віднести випробувану кров до АВ (IV) групи.

Визначення групової належності крові за допомогою цоліклонів.

Застосування цоліклонів так само, як і використання поліклональних сироваток, дозволяє визначити групову приналежність крові за системою АВ0 завдяки виявленню аглютиногенів еритроцитів у реакції прямої гемаглютинації.

Цоліклони анти-А, анти-В та анти-АВ являють собою моноклональні антитіла класу М, що продукуються мишачими гібридомами.

1) На площину наносяться окремими піпетками великі краплі цоліклонів анти-А, анти-В та анти-АВ під відповідними написами.

2) Поруч із краплями реагентів наносять у 10 разів менші краплі досліджуваної крові (по одній краплі крові поряд з кожною краплею реагенту).

3) Кров поєднується з реагентами окремими скляними паличками.

4) Пластина або планшет коливаються протягом 3 хвилин.

5) Враховують реакцію.

Трактування результатів.

Можливе одержання 4 варіантів результатів дослідження:

1) Якщо реакція аглютинації не розвинулася з цоліклонами анти-А, анти-В та анти-АВ, - то досліджувану кров слід віднести до 0 (I) групи, оскільки її еритроцити не містять аглютиногенів А та В.

2) Якщо реакція аглютинації відмічена після змішування краплі досліджуваної крові з реагентами анти-А і анти-АВ, значить, еритроцити містять аглютиноген А, а досліджувана кров має бути віднесена до групи А(II). При цьому аглютинація з цоліклоном анти-В відсутня.

3) Якщо спостерігається реакція аглютинації з цоліклонами анти-В і анти-АВ, але відсутня з цоліклоном анти-А, - досліджувана кров відноситься до (III) групи, так як її еритроцити містять аглютиноген В.

4) Якщо спостерігається позитивна реакція аглютинації у всіх 3 краплях, де змішані реагенти з краплями випробуваної крові, - еритроцити досліджуваної крові містять аглютиноген А і В, а значить, кров відноситься до АВ (IV) групи. Але для обґрунтованого затвердження цього факту слід виключити спонтанну неспецифічну реакцію. Для цього слід провести змішування краплі крові, що досліджується, з краплею ізотонічного розчину хлориду натрію на площині. За відсутності аглютинації в контрольному дослідженні кров з впевненістю може бути віднесена до АВ (IV) групи.

Визначення групової власності крові перехресним способом.

Цей метод визначення групової належності крові передбачає одночасне визначення як аглютиногенів в еритроцитах досліджуваної крові, так і аглютинінів, що містяться у її плазмі чи сироватці. Як діагностикуми використовують як стандартні гамагглютинуючі сироватки, так і стандартні еритроцити з відомою груповою приналежністю.

1) Під попередньо зробленими позначеннями на платівці з білою поверхнею, що змочується, наносять великі краплі стандартних гемагглютинирующих сироваток перших 3 груп у двох серіях. Краплі сироваток мають бути об'ємом не менше 0,1 мл. Таким чином, виходять 6 крапель, що розташовуються в 2 ряди.

2) На нижню частину пластинки, також під відповідними позначеннями, наносять маленькі краплі (0,01 мл) суспензії стандартних еритроцитів перших 3 груп.

3) З пробірки, що містить центрифуговану випробувану кров, піпеткою витягують сироватку (плазму) і змішують великі краплі плазми об'ємом 0,1 мл зі стандартними еритроцитами.

Тими ж піпетками наносять маленькі (0,01 мл) краплі осаду еритроцитів випробуваної крові поруч із краплями стандартних гемаглютинуючих сироваток.

4) Краплі, в яких змішані еритроцити випробуваної крові зі стандартними сироватками, і плазма випробуваної крові зі стандартними еритроцитами, перемішують окремими скляними паличками, пластинку похитують, потім залишають у спокої 1-2 хвилини і знову похитують. Спостереження за реакцією, що розвивається, проводять не менше 5 хвилин.

5) Через 3 хвилини у всі краплі, додають по краплі фізрозчину, знову похитують платівку для кращого змішування реагентів і враховують результати через 5 хвилин.

Трактування результатів.

Трактування результатів передбачає порівняння результатів взаємодії стандартних еритроцитів з плазмою випробуваної крові та стандартних гемаглютинуючих сироваток з еритроцитами крові, групова приналежність якої має бути встановлена. Можливі 4 комбінації:

1) При взаємодії зі стандартними сироватками еритроцитів випробуваної крові аглютинація не розвинулася в жодній із проб. Це свідчить про відсутність в еритроцитах аглютиногенів А і В. При змішуванні стандартних еритроцитів з плазмою випробуваної крові аглютинації немає тільки з еритроцитами 0(I) групи, а є з еритроцитами А(II) і В(III) груп. Останнє підтверджує належність випробуваної крові до 0(I) групи, т.к. вказує на наявність у її сироватці аглютинінів альфа та бета.

2) При взаємодії еритроцитів випробуваної крові зі стандартними сироватками відбулася аглютинація із сироватками 0(I) та В(III) груп за відсутності імунного склеювання еритроцитів у краплі сироватки А(II) групи. Це свідчить про наявність в еритроцитах випробуваної крові аглютиногену А. Сироватка (плазма) випробуваної крові дає аглютинацію зі стандартними еритроцитами (III) групи, а з еритроцитами 0 (I) і А (II) - ні. Це підтверджує належність випробуваної крові до А(II) групи, т.к. свідчить про наявність у сироватці аглютиніну бета.

3) При позитивній реакції аглютинації зі стандартними сироватками 0(I) та А(II) груп констатується наявність в еритроцитах випробуваної крові аглютиногену, тобто. стверджується її приналежність до (III) групі. При змішуванні сироватки (плазми) випробуваної крові зі стандартними еритроцитами реакція аглютинації виявляється негативною з еритроцитами 0(I) та В(III) груп, але позитивною з еритроцитами А(II) групи. Таким чином виявляється наявність у сироватці випробуваної крові аглютиніну альфа, що підтверджує належність випробуваної крові до (III) групи.

4) При змішуванні еритроцитів випробуваної крові зі стандартними сироватками отримують реакцію аглютинації у всіх 6 краплях, де відбувалося змішування досліджуваних еритроцитів із сироватками перших 3 груп у 2 серіях. При контрольному дослідженні із сироваткою АВ(IV) групи реакція аглютинації виявляється негативною, що дозволяє говорити про належність випробуваної крові до АВ(IV) групи. Дослідження результатів взаємодії сироватки (плазми) досліджуваної крові зі стандартними еритроцитами у всіх випадках покаже відсутність аглютинації, що свідчить про відсутність природних аглютинінів проти аглютиногенів А та В у плазмі випробуваної крові, тобто. підтвердить її приналежність до АВ(IV) групи.

Визначення резус-приналежності крові

В даний час існує кілька способів визначення резус-приналежності крові (констатації наявності або відсутності Rh 0 D антигену в еритроцитах). виявляють саме цей різновид резус-антигена.

Визначення резус-приладдя за допомогою цоліклону анти-Д-Супер.

Початком цього препарату є моноклональні повні антирезусні антитіла, що відносяться до класу Ig M.

1. Визначення резус-приладдя на площині.

На пластинку з поверхнею, що змочується, наносять 1 краплю Цоліклону Анти-D-Cynep.

Поруч міститься в 5-10 разів менша за обсягом крапля випробуваної крові або суспензії еритроцитів.

Кров (завись еритроцитів) змішують з реагентом.

Через 20-30 секунд після змішування пластинку трохи похитують протягом 3 хвилин.

Враховують результати шляхом огляду неозброєним оком.

Трактування результатів.

Поява аглютинації при змішуванні випробуваної крові з реагентом свідчить, що еритроцити крові містять антиген Rh 0 D, тобто. є резус-позитивними. За відсутності аглютинації досліджувана кров розцінюється як резус-негативна.

Визначення резус-фактору Rh 0 (D) реакцією конглютинації із застосуванням желатину.

У 2 пробірки вносять по 1 краплі суспензії досліджуваних еритроцитів і по 2 краплі 10% розчину желатину, підігрітого до 46-48 градусів до розрідження.

В одну з пробірок додають 2 краплі групоспецифічної (тобто відноситься до тієї ж групи за системою АВО, що й досліджувані еритроцити) антирезусної людської сироватки. В іншу пробірку сироватку не додають (вона служить для контролю специфічності аглютинації)

Паралельно так само в окремих маркованих пробірках досліджують стандартні резус-позитивні та резус-негативні еритроцити (їх змішують з антирезусною сироваткою та розчином желатину, як описано в попередніх пунктах).

Вміст пробірок перемішують і поміщають пробірки на водяну баню при температурі 46-48 градусів на 15 хвилин або в термостат при такій же температурі на 30 хвилин.

Після закінчення зазначеного часу пробірки витягають з термостата (водяної лазні) і додають у кожну з них по 5-8 мл фізрозчину, з яким ретельно перемішують вміст пробірок.

Оцінюють результати переглядом пробірок у світлі неозброєним оком або через лупу з 2-5-кратним збільшенням.

Трактування результатів.

При позитивному результаті (досліджувані еритроцити є резус-позитивними і дають реакцію аглютинації з антирезусними сироватками) аглютинати добре помітні на тлі майже знебарвленої рідини. При негативному результаті рідина в пробірці з суспензією випробовуваних еритроцитів забарвлена в рівномірний червоний або рожевий колір, а пластівці аглютинатів не виявляються. Результат враховують як істинний за наявності аглютинації в паралельному досвіді зі стандартними резус-позитивними еритроцитами і за відсутності аглютинації в досвіді зі стандартними резус-негативними еритроцитами, а також - у пробірці, що містить тільки досліджувані еритроцити та желатин (контроль).

Позитивний результат свідчить у тому, що еритроцити випробуваної крові містять резус-антиген (тобто є резус-позитивними), а негативний - у тому, що досліджувані еритроцити містять резус-антигена, тобто. є резус-негативними.

Доповнення. Для дослідження можна застосовувати як нативну кров, так і суміші з консервантом, але в останньому випадку консервант необхідно відмити десятикратним об'ємом ізотонічного розчину хлориду натрію. Крім того, у кожному випадку визначення резус-приладдя цим способом слід використовувати групоспецифічні антирезусні сироватки 2 серій (контроль сироватки).

Визначення резус приладдя за допомогою універсального антирезусного реагенту Rh 0 (D).

Універсальний антирезусний реагент є людською сироваткою, що містить антирезусні антитіла, але позбавлену антитіл альфа і бета, - чому вона і може бути використана для визначення резус-приналежності крові будь-якої групи системи АВО. З метою забезпечення протікання реакції до неї додають 33% розчин поліглюкіну або 20% розчин альбуміну

У конічну пробірку поміщають 1 краплю досліджуваної крові або суспензії еритроцитів.

Додають 2 краплі універсального антирезусного реагенту і змішують з кров'ю, що досліджується.

Нахиляють пробірку для того, щоб вміст її розтікався по стінках, і повільно обертають пробірку навколо вертикальної осі для кращого контакту еритроцитів і реагенту протягом 5 хвилин.

Через 5 хвилин додають 2-3 мл ізотонічного розчину хлориду натрію і перемішують (не збовтуючи) вміст пробірки.

Враховують результат, розглядаючи вміст пробірки в світлі, що проходить, неозброєним оком.

Трактування результатів.

За наявності аглютинатів і просвітленні рідини в пробірці досліджувані еритроцити містять антиген Rh 0 (D), а випробувана кров є резус-позитивною. При відсутності аглютинатів і рожевому забарвленні рідини, що дає при струшуванні пробірки перламутровий відлив, - кров, що досліджується, є резус-негативною.

Значення та способи визначення індивідуальної сумісності (АВ0) та резус-сумісності. Біологічна сумісність. Обов'язки лікаря, що переливає кров.

Проби на індивідуальну сумісність крові донора та реципієнта.

При проведенні проб на індивідуальну сумісність виявляють, чи є в плазмі (сироватці) реципієнта антитіла, спрямовані проти еритроцитів донора, здатні викликати аглютинацію еритроцитів у судинному руслі реципієнта з подальшим гемолізом. Оскільки антитіла, що містяться в плазмі донорської крові, при переливанні розлучаються значно більшим обсягом крові реципієнта зі зниженням їх титру, - зворотні взаємини (тобто донорських антитіл до антигенів еритроцитів реципієнта) у трансфузіології не мають клінічного значення.

Проба на сумісність крові донора та реципієнта на площині при кімнатній температурі.

На білу пластинку з поверхнею, що змочується, наносять велику краплю (2-3 краплі, взяті піпеткою) сироватки або плазми реципієнта.

Додають до неї у 10 разів меншу краплю крові донора.

Кров донора змішують із плазмою (сироваткою) реципієнта, а пластинку похитують протягом 1-2 хвилин. Потім даючи їй спокій на 1-2 хвилини.

Через 5 хвилин після початку реакції (після змішування крапель крові та плазми) враховують реакцію після додавання до суміші реагентів (крові та плазми) краплі фізрозчину.

Трактування результатів.

На платівці моделюється те, що може статися в судинному руслі реципієнта. Якщо утворюються пластівці аглютинатів, а суміш крові донора і плазми (сироватки) реципієнта світлішає, кров цього донора цьому реципієнту переливати не можна, т.к. у плазмі реципієнта містяться антитіла проти антигенів еритроцитів донорської крові. Якщо ж суміш крові та плазми залишається червоного кольору і аглютинати не визначаються, це свідчить про відсутність повних антитіл у плазмі у реципієнта, здатних викликати імунне склеювання еритроцитів донорської крові. Отже, таку кров цьому, конкретному донору, з плазмою якого ми маніпулювали, можна перелити.

Проба на сумісність крові донора та реципієнта з 33% розчином поліглюкіну (проба на резус-сумісність).

У пробірку поміщають велику краплю плазми (сироватки) реципієнта (2-4 краплі взяті піпеткою).

Додають маленьку краплю крові донора (співвідношення об'ємів крові та плазми 1:10)

До одержаної суміші реагентів додають краплю 33% розчину поліглюкіну.

Вміст пробірки ретельно перемішують, набирають пробірку, щоб вміст розтіклося по її стінках, і повільно повертають навколо вертикальної осі протягом 5 хвилин, забезпечуючи найбільш повний контакт елементів вмісту пробірки один з одним.

Після закінчення 5 хвилин до пробірки доливають 3-4 мл ізотонічного розчину хлориду натрію, а вміст перемішують, не збовтуючи.

Враховують результати, розглядаючи вміст пробірки неозброєним оком або під лупою з 2-5-кратним збільшенням.

Трактування результатів.

При появі пластівців аглютинатів та освітленні рідини в пробірці кров донора несумісна з кров'ю цього реципієнта. Якщо ж рідина в пробірці рівномірно забарвлена в червоний колір, а аглютинати не виявляються, - можна зробити висновок про відсутність у плазмі реципієнта неповних антитіл проти антигенів донорських еритроцитів, і, отже, кров цього донора може бути перелита цьому реципієнту.

Проба на сумісність із застосуванням 10% розчину желатину (проба на резус-сумісність).

У пробірку поміщають 1 краплю відмитих еритроцитів донора.

Додають до еритроцитів донора 2 краплі підігрітого 10% розчину желатину 2 краплі сироватки реципієнта.

Ретельно перемішують вміст пробірки.

Пробирку поміщають на 10 хвилин на водяну баню при температурі 46-48 градусів.

Після закінчення зазначеного часу додають пробірку 5-8 мл ізотонічного розчину хлориду натрію і перемішують вміст пробірки перевертанням (не збовтуючи).

Враховують результати неозброєним оком або під лупою з 2-5-кратним збільшенням.

Трактування результатів.

Якщо реакція позитивна, тобто. відзначається поява аглютинатів на тлі знебарвленої рідини, - ця донорська кров цьому реципієнту не може бути перелита. Якщо ж рідина в пробірці рівномірно забарвлена і пластівці аглютинатів не виявляються, кров донора сумісна з кров'ю реципієнта і може бути йому перелита.

Непряма проба Кумбса.

При проведенні цієї проби (дуже високочутливої) еритроцити донора відмивають 8-10-кратним об'ємом ізотонічного сольового розчину, після чого центрифугують, і реакції використовують еритроцити з осаду, тобто. еритроцити повинні бути максимально звільнені від присутності інших клітинних елементів та плазми.

Одну маленьку краплю (0,01 мл) відмитих еритроцитів донора поміщають у пробірку.

Додають 3 краплі сироватки реципієнта та ретельно перемішують вміст пробірки.

Пробірку перешкодять термостат при температурі 37 градусів на 45 хвилин.

Після закінчення зазначеного часу інкубації в пробірку наливають 8-10-кратний об'єм сольового ізотонічного розчину (хлориду натрію) і перемішують вміст пробірки.

Центрифугують пробірку до осадження еритроцитів.

Процедуру відмивання повторюють 3-4 рази, щоразу ретельно видаляючи надосадову рідину.

До відмитих еритроцитів додають 4-5 крапель ізотонічного розчину хлориду натрію для одержання суспензії еритроцитів.

Одну краплю суспензії еритроцитів поміщають на пластинку з білою поверхнею, що змочується.

До суспензії еритроцитів на площині додають 1-2 краплі антиглобулінової сироватки і перемішують скляною паличкою.

Платівку періодично похитують протягом 10 хвилин.

Враховують результат неозброєним оком або під лупою з 2-5-кратним збільшенням.

Трактування результатів.

Якщо після додавання антиглобулінової сироватки до донорських еритроцитів, інкубованих з сироваткою реципієнта, утворюються аглютинати з освітленням рідини, - в крові реципієнта є неповні антитіла проти резус-антигена або інших ізоантигенів еритроцитів донора, і тому. Якщо ж аглютинації немає, кров даного донора сумісна з кров'ю даного реципієнта, і отже, може бути йому перелита.

Помилки під час проведення проб на групову, резус-приналежність та індивідуальну сумісність.

У більшості випадків помилки та утруднення під час проведення імуносерологічних досліджень пов'язані з порушенням техніки їх проведення. Рідше як причини помилкових висновків можуть зустрічатися індивідуальні особливості досліджуваної крові.

У всіх випадках отримання сумнівних результатів необхідно повторити дослідження з використанням реагентів інших серій за точного дотримання правил проведення проби. При повторному отриманні сумнівних результатів зразок крові слід надіслати на дослідження до спеціалізованої лабораторії.

Найбільш типові причини помилок та утруднень при проведенні імуносерологічних досліджень.

· Використання неякісних реагентів (зі терміном придатності, що поминув, помутніли, частково висохли і т.д.)

· Порушення температурних режимів проведення реакцій. При проведенні визначення групової належності крові за системою АВО температура навколишнього середовища має бути в межах від 15 до 25 градусів за Цельсієм. При нижчій температурі можливий розвиток неспецифічної аглютинації, обумовленої холодовими аглютинінами, а за високої температури аглютинини альфа і бета знижують свою активність.

· Порушення правильних співвідношень реагуючих середовищ. При проведенні проби із сироватками (у випадках визначення групової належності за системою АВО) відношення обсягів крові та сироватки має бути 1:10, а при використанні моноклональних антитіл та проб з колоїдами (при визначенні резус-приналежності) – 2-3:10. В іншому випадку аглютинація може виявитися непоміченою (через екранування аглютинатів неаглютинованими еритроцитами або малої кількості аглютинатів).

· Порушення тимчасових режимів проведення проб. Початок аглютинації (особливо при проведенні проб з моноклональними антитілами) буває помітним у перші секунди від моменту змішування середовищ, що реагують, проте облік реакції повинен проводитися в строго певний час, т.к. іноді зустрічаються різновиди антигенів, що мають слабку аглютинабельність і дають пізню реакцію (різновиди аглютиногену А, рідше - В).

· Ігнорування необхідності проведення контрольних досліджень (наприклад, із сироваткою АВ(IV) групи при визначенні групової приналежності зі стандартними геаглютинуючими сироватками або проб з колоїдами при визначенні резус-приналежності).

· Підвищена аглютинабельність еритроцитів – може спостерігатися при тяжких гнійних захворюваннях, опіках, цирозах печінки, аутоімунних та гематологічних захворюваннях.

· Зниження аглютинабельності еритроцитів – нерідко зустрічається при лейкозах.

· Кров'яний химеризм - явище, що дуже рідко зустрічається, що має місце у різнояйцевих близнюків, при пересадці донорського кісткового мозку або після переливань (вимушених) іногрупної, але сумісної крові у великих обсягах.

Попередження помилкових результатів досліджень полягає у строгому дотриманні існуючих правил визначення групової та резус-приналежності, проб на сумісність з обов'язковим урахуванням характеру захворювання та загального стану реципієнта.

Біологічна проба

Біологічна проба проводиться в обов'язковому порядку при переливаннях донорської крові, еритроцитів, плазми, концентратів лейкоцитів, незалежно від об'єму і швидкості гемотрансфузії.

Біологічна проба проводиться безпосередньо перед трансфузією і полягає в 3-кратному переливанні по 10-15 мл трансфузійного середовища струминно або з максимальною швидкістю (2-3 мл за хв.) з інтервалами в 5 хвилин, під час яких здійснюють інфузію сольових розчинів, щоб уникнути тромбування. голки. Якщо під час проведення біологічної проби з'являється хоча б один із симптомів, що свідчать про несумісність трансфузійного середовища, її переливання припиняють та проводять відповідні заходи. До таких симптомів відносяться озноб, біль у попереку та внизу живота, відчуття сором'язливості та біль у грудях, нудота, блювання, тахікардія, зниження артеріального тиску. Під час операції під загальним знеболенням ознаками несумісності можуть бути посилення кровоточивості тканин, зниження артеріального тиску, збільшення тахікардії, виділення сечі, забарвленої у червоний або бурий колір (у разі катетеризації сечового міхура).

Переливання крові. Показання та протипоказання до переливання крові. Сучасні правила переливання крові за групами системи АВ0 та системи резус. Способи та техніка переливання крові.

Показання до переливання крові визначалися відомими механізмами її дії:

· Замісним.

· Гемостатичним.

· Імуностимулюючим.

· Дезінтоксикаційним.

· Використовується для парентерального харчування.

Однак, як показав накопичений досвід, таке широке використання гемотрансфузій далеко не завжди виявлялося ефективним, більше того, нерідко виявлялося небезпечним: хворий отримував з кров'ю, крім еритроцитів, нежиттєздатні лейкоцити, тромбоцити, білки, антигени та антитіла.

Повторні переливання крові призводили до алоімунізації хворих.

В даний час основним показанням до переливання крові є гостра масивна крововтрата не менше 25 – 30 % ОЦК зі зниженням гемоглобіну нижче 70 – 80 г/л, гематокриту – нижче 25 % та виникненням циркуляторних порушень.

Крім того, переливання крові показано при шоці та термінальних станах, у шкідливих випадках при обмінних переливаннях при гемолітичній хворобі новонароджених, при операціях, що супроводжуються масивною крововтратою.

В інших випадках слід використовувати фракції крові або кровозамінники.

Протипоказання до гемотрансфузії.

Абсолютних протипоказань до переливання немає.

Відносні протипоказання:

· Гостро порушення мозкового кровообігу.

· Недостатність кровообігу II ст. – ІІІ ст.

· Гіпертонічна хвороба ІІІ ст.

· Печінкова та ниркова недостатність.

· Активний (дисемінований) туберкульоз легень.

· Тяжка бронхіальна астма.

· Алергічні захворювання.

Правила переливання крові.

В даний час переливання крові та її компонентів допускається лише однойменної групи та Rh – приналежності.

У виняткових випадках (за життєвими показаннями) за відсутності одногрупної крові чи її компонентів допускається переливання еритромаси О(I) групи,Rh – негативної, але з більше 500 мл (крім дітей!).

За відсутності одногрупної плазми реципієнту може бути перелита плазма групи АВ(IV).

Лікар, який проводить переливання крові або її еритромаси, зобов'язаний:

· Перед кожним переливанням визначити групу крові та Rh – належність реципієнта.

· Переконавшись у придатності донорської крові, та, заповнивши систему, визначити групу крові та Rh-приналежність донора, узгодити з етикеткою на гемоконі.

· Поставити пробу на індивідуальну сумісність крові реципієнта та донора.

· Поставити пробу на резус – сумісність.

· Провести пробу на біологічну сумісність.

Залишок крові (10 – 15мл) у гемоконі після гемотрансфузії зберігають у холодильнику 48 годин.

Протягом 3-х годин після закінчення гемотрансфузії у хворого вимірюють температуру, пульс і артеріальний тиск. Наступного ранку проводиться аналіз крові та сечі.

Кожне переливання крові, її фракцій, і навіть кровозамінників записується в трансфузійний лист, що у історії хвороби хворого.

Способи та техніка переливання крові:

Пряме переливання. Кров переливається за допомогою апарату безпосередньо з вени донора у вену реципієнта без використання консерванту.

З-за небезпеки інфікування донора нині не використовується.

Непряме переливання. Донорська кров консервується в гемокон або ампулу і зберігається в холодильнику при t 0 + 4 0 С.

У разі потреби використовується для переливання без спеціального підігріву. Непряме переливання крові та її фракцій використовується дуже широко.

Реінфузія крові: переливання крові хворого, що вилилася в серозні порожнини (черевну, плевральну), при закритій травмі або під час операції. Кров забирається за допомогою спеціального апарату або, за відсутності такого, в екстрених випадках фільтрується через 8 шарів марлі, додається консервант і відразу переливається внутрішньовенно.

Метод дуже ефективний.

Протипоказання: ушкодження порожнистих органів, перебування крові в серозній порожнині більше 12 годин, гемоліз крові.

Аутотрансфузія крові. Використовується в плановій хірургії, коли за кілька днів до операції у хворого беруть із вени 400 – 500 мл крові, додають консервант, після чого гемокон зберігають у холодильнику, а під час операції переливають хворому його власну кров.

Метод дуже перспективний.

Протипоказання: вихідна анемія у хворого.

Обмінні переливання крові – часткове чи повне видалення крові з кров'яного русла з одночасним відшкодуванням такою самою кількістю донорської крові.

Показання: гемолітична жовтяниця новонароджених, гемотрансфузійний шок, тяжкі отруєння. При цьому видаляється та одночасно інфузується кров зі швидкістю 1000 мл за 15 – 20 хвилин.

Обмінні переливання використовують рідко.

Способи введення крові:

В даний час переважно використовується внутрішньовенне переливання крові.

Після постановки проб на сумісність кров переливають найчастіше кубітальну вену шляхом її пункції, рідше – через спеціальну канюлю, поставлену вену. При необхідності переливання великих обсягів трансфузійних середовищ використовують постійний катетер, який ставиться в центральну вену (частіше підключичну).

Зазвичай використовується крапельне переливання зі швидкістю 40 – 60 крапель за хвилину.

При необхідності термінового заміщення ОЦК може використовуватись внутрішньовенне струменеве переливання крові.

Внутрішньоартеріальне нагнітання крові.

Показання: шок ІІІ – ІV ст., термінальні стани.

Кров нагнітається в периферичну артерію, яка попередньо оголюється під тиском 200 - 220 мм рт. ст. із швидкістю 200 мл за 1,5 – 2 хвилини. Кров, що вводиться під тиском, дратує ангіорецептори і забезпечує відновлення вінцевого кровотоку.

Внутрішньоартеріальне, внутрішньосерцеве нагнітання крові проводиться дуже рідко, тільки в реанімаційній практиці та під час операцій на грудній клітці.

Внутрішньокісткове переливання крові.

Нині практично немає. Застосовувалося при великих опіках, коли периферичні вени були недоступні. Переливання проводиться в грудину, здухвинну, кістку п'яти зі швидкістю від 5 до 30 крапель на хвилину.

Крім ускладнень, пов'язаних безпосередньо з гемотрансфузією, можливий розвиток остеомієліту.