У мікроскопі для отримання збільшеного зображення дрібних об'єктів використовується збільшувальна здатність опуклих лінз. На рис. П.2.3 зображено мікроскоп із зазначенням деталей його будови. Мікроскоп-дорогий прилад, тому необхідно поводитися з ним обережно і не нехтувати такими правилами:

1. Зберігайте мікроскоп у ящику (або під ковпаком), щоб захистити його від пилу.

2. Виймайте його з шухляди двома руками і ставте на місце м'яко, щоб уникнути струсу.

3. Лінзи мають бути чистими, для цього їх необхідно протирати шматочком тканини.

4. Мікроскоп завжди потрібно фокусувати, переміщуючи трубу вгору від препарату. Інакше легко пошкодити препарат.

5. Тримайте відкритими обидва очі та дивіться ними по черзі.

Настроювання мікроскопа для роботи при малому збільшенні

1. Поставте мікроскоп на стіл і сядьте у зручній позі. Досліджуваний об'єкт на предметному столику мікроскопа має бути освітлений. Для цього користуються спеціальним освітлювачем, світлом із вікна або від настільної лампи. У двох останніх випадках використовують увігнуту поверхню дзеркала, що знаходиться під предметним столиком. За допомогою дзеркала світло направляють через отвір у предметному столику. Якщо є потрібний конденсор, то для напрямку світла через нього використовують плоску поверхню дзеркала.

2. За допомогою гвинта грубого налаштування підніміть тубус мікроскопа і повертайте револьверну головку доти, доки об'єктив з малим збільшенням (× 10 або 16 мм) не потрапить у паз тубуса (при цьому лунає клацання).

3. Покладіть препарат, який ви збираєтеся розглядати, на предметний столик мікроскопа так, щоб матеріал, що знаходиться під покривним склом, знаходився над серединою отвору в предметному столику.

4. Дивлячись на предметний столик і препарат збоку, опускайте тубус за допомогою гвинта грубого налаштування доти, доки об'єктив з малим збільшенням не виявиться приблизно 5 мм від препарату.

5. Дивлячись у мікроскоп, повертайте гвинт грубої настройки, доки об'єкт не потрапить у фокус.

Настроювання мікроскопа для роботи при великому збільшенні

1. При роботі з об'єктивом великого збільшення для створення достатнього освітлення необхідне штучне світло. Для цього використовують настільну лампу або спеціальний освітлювач для мікроскопа з матовою лампочкою. При роботі з лампою розжарювання необхідно між нею та мікроскопом помістити аркуш паперу. Поверніть дзеркало плоскою поверхнею вгору так, щоб світло, відбиваючись, потрапляло в мікроскоп.

2. Сфокусуйте конденсор, не прибираючи препарат з предметного столика. Підніміть конденсор так, щоб відстань між ним та предметним столиком була не більше 5 мм. Дивлячись у мікроскоп, повертайте гвинт грубого налаштування, поки об'єкт не потрапить у фокус. Тепер наводьте фокус конденсора, поки зображення лампи не накладеться точно на препарат. Помістіть конденсор дещо поза фокусом так, щоб зображення лампи зникло. Тепер освітлення має бути оптимальним. У конденсор вмонтовано діафрагму. Нею регулюють величину отвору, крізь який проходить світло. Цей отвір має бути відкрито якнайширше. Таким чином, досягається максимальна чіткість зображення (див. рис. П.2.3).

3. Повертайте револьверну головку, доки об'єктив великого збільшення (× 40 або 4 мм) не потрапить у паз. Якщо на малому збільшенні фокус вже встановлено, то при повороті револьверної головки об'єктив великого збільшення автоматично встановиться приблизно у фокусі. Завжди фокусуйте рух об'єктива вгору за допомогою гвинта тонкого налаштування.

4. Якщо під час руху об'єктиву з лінзами великого збільшення фокус не встановлюється, зробіть таке: дивлячись на предметний столик збоку, опускайте тубус мікроскопа доти, доки лінза майже не торкнеться препарату. Слідкуйте за відображенням лінзи об'єктива на препараті та домагайтеся того, щоб лінза майже торкнулася свого відображення.

5. Дивлячись у мікроскоп і повертаючи гвинт тонкого налаштування, повільно піднімайте об'єктив, доки зображення не потрапить у фокус.

Збільшення

Збільшення об'єкта під мікроскопом відбувається за допомогою окуляра та лінзи об'єктива (табл. П.2.1).

Масляна іммерсія

Для того, щоб отримати сильніше збільшення, ніж при роботі зі звичайним об'єктивом великого збільшення, необхідно використовувати масляно-імерсійну лінзу. Здатність лінзи збирати світло значною мірою посилюється, якщо між лінзою об'єктива та покривним склом помістити рідину. Рідина повинна мати той самий коефіцієнт заломлення, що й сама лінза. Тому як рідина зазвичай використовують кедрова олія.

1. Покладіть препарат на предметний столик і сфокусуйте зображення так само, як при роботі зі звичайним збільшенням. Замість об'єктиву з лінзою великого збільшення встановіть об'єктив з масляно-імерсійною лінзою.

2. Капніть краплю кедрової олії на покривне скло безпосередньо над досліджуваним об'єктом.

3. Знову сфокусуйте зображення тепер під малим збільшенням, потім поворотом револьверної головки встановіть об'єктив з масляно-імерсійною лінзою так, щоб його кінчик торкався краплі олії.

4. Дивлячись у мікроскоп, дуже обережно сфокусуйте лінзу за допомогою гвинта тонкого налаштування. Пам'ятайте, що фокусна площина лінзи знаходиться лише за 1 мм від поверхні покривного скла.

5. Закінчивши роботу, зітріть з лінзи масло м'якою ганчірочкою.

М: Агропромиздат, 1988. - 271 c.
ISBN 5-10-000614-5
завантажити(пряме посилання) : praktiumpocitologii1988.djvu Попередня 1 .. 57 > .. >> Наступна
Постійний мікротомний препарат із поздовжніми зрізами коренів спочатку розглядають при малому збільшенні мікроскопа. На кінчику кореня добре помітний чохлик, що оберігає конус наростання від пошкоджень під час зростання
у ґрунті. Далі слідує конус наростання кореня, або зона поділу клітин (близько 2 мм). За конусом наростання розташована зона розтягування, де клітини витягуються у довжину, та був зона всмоктування з кореневими волосками. Мітоз вивчають на меристематичних клітинах конуса наростання кореня, де є багато клітин, що діляться. Мерістема складається з рядів клітин прямокутної форми. Кожна низка клітин веде своє походження від однієї клітини.
Після ознайомлення з коренем при малому збільшенні слід розглядати з об'єктивом 40X.
Інтерфаза. На постійних постійних препаратах інтерфазний стан ядра характеризується ніжною структурою хроматину. Хромосоми тим часом сильно деспіралізовані і виявляються. Ядра мають округлу форму та гомогенну зернисту структуру. З інших компонентів ядра добре видно ядерця. При використанні деяких ядерних фіксаторів, наприклад Бродського, та фарбуванні препаратів гематоксиліном можна побачити з імерсією під мікроскопом (об'єктив 90Х) в ядрі рослинної клітини хроматинову мережу та великі хроматини зерна, що утворюють хромоцентри.
Після завершення інтерфази клітини вступають у мітоз. Розподіл клітин зазвичай починається з перетворень в ядрі.
У профазі (рис. 47) ядро ​​збільшується, і в ньому стають чітко видно хромосомні нитки, які в цьому
Мал. 47. Мітоз у клітинах кореня цибулі Allium сірка (мікро-томний препарат):
1 профаза; 2 - метафаза; Я - анафаза; 4 - тіло фаза; 5 - інтерфаза.
час уже спіралізований. Кожна хромосома після подвоєння в інтерфазі складається із двох сестринських хроматид, з'єднаних однією центромірою. Наприкінці профази зазвичай зникають ядерна оболонка" і ядерця. На препаратах завжди можна знайти ранню і пізню профази і порівняти їх між собою. Хромосомні нитки чіткіше видно в пізній профазі, і нерідко можна помітити, що вони подвоєні.
Метафаза Після того, як зникне ядерна оболонка, видно, що хромосоми досягли максимальної конденсації, стали коротшими і переміщаються до екватора клітини, розташовуючись в одній площині. Цей період у мітозі називається метафазою. Клітина вже має мітотичне (ахроматинове) веретено, що складається з опорних ниток, що тягнуть. Перші з них протягнуті від одного полюса до іншого, а другі пов'язують центроміри хромосом із полюсами.
На препаратах, забарвлених гематоксиліном, нитки мітотичного веретена не завжди видно, оскільки цей ядерний барвник. Однак у навчальному фільмі та на інших препаратах добре видно, що кожна хромосома, будучи прикріпленою до мітотичного веретена, складається з двох паралельно розташованих хроматид.
Подвоєна хромосома в метафазі зазвичай розташовується перпендикулярно до ниток мітотичного веретена і на рівній відстані від полюсів. Центромери всіх хромосом знаходяться в одній екваторіальній площині, що дуже зручно для підрахунку хромосом та вивчення їхньої морфології. "
Мікротомні препарати для підрахунку хромосом зазвичай роблять із поперечних зрізів коренів, щоб метафаза була видна з полюса. У такому положенні добре видно, що хромосоми розташовуються на певній відстані один від одного. У цей час їх можна замалювати та підрахувати.
Анафаза починається з моменту поділу центроміру, а потім відбувається роз'єднання хроматид. Сестринські хроматиди кожної хромосоми розходяться до різних полюсів. Так відбувається точний розподіл генетичного матеріалу, і кожному полюсі виявляється таку ж число хромосом, яке було в вихідної клітини до їх подвоєння. Наприклад, у жита у соматичних клітинах 14 хромосом. У метафазі у неї
14 подвоєних (дихроматидних) хромосом. В анафазі після розходження сестринських хроматид на полюсах виявляється знову по 14 хромосом.
Після поділу центроміри кожна хроматида набуває функцій самостійної хромосоми.
Переміщення хроматид до полюсів відбувається внаслідок скорочення ниток, що тягнуть, і подовження опорних ниток мітотичного веретена. При перегляді навчального фільму видно, що цей процес відбувається дуже швидко в порівнянні з іншими
ними фазами та його важче вловити. Тому на препаратах анафаза трапляється рідше, ніж профаза.
У телофазі хромосоми на кожному полюсі зазнають деконденсації, тобто процес, протилежний тому, що відбувається в профазі. Контури хромосом втрачають свою чіткість, мітотичне веретено руйнується, відновлюється ядерна оболонка і з'являються ядерця. Таким чином, після різних структурних перетворень відбувся поділ нехідного ядра на два дочірні. Під час телофази з фраг-мопласту формується клітинна стінка, яка поділяє весь вміст цитоплазми на дві рівні частини, – відбувається цитокінез. Так закінчується мітоз.
Про тривалість окремих фаз мітозу можна судити з прижиттєвих спостережень. Встановлено, що в ендоспермі гороху профаза триває 40 хв, метафаза - 20, анафаза-12, телофаза-1.10 хв, тобто найбільш тривалі виявляються перша та остання фази мітозу. Весь мітоз триває близько 3 год. Тривалість мітотичного циклу - у кілька разів більша. Так, у кінських бобів (Vicia fab а) весь мітотичний цикл триває 30 год, причому мітоз становить 4 год, а інтерфаза - 26 год, з яких період G - 12 год, S - 6 год, С2 - 8 год. зелений найкоротший мітотичний цикл у деяких клітинах триває 8 год, а більшість клітин проходить його за 10-12 год. З трьох періодів інтерфази найбільш варіабельний за тривалістю Gi-період. Кінетика мітозу залежить від різних внутрішніх та зовнішніх факторів, рівня ілоїдності, pH середовища, гормональної активності, температури, режиму освітлення та ін.

1.	Вимити та осушити руки
2.	Одягти рукавички
3. Підготовка мікроскопа до роботи:
3.1.	Встановити мікроскоп на робочому столі з відривом 3 – 5 див від краю, розмотати шнур, вставити вилку в розетку.
3.2.	Встановити об'єктив слабкого збільшення (8х) на відстань близько 1 см (фокусна відстань об'єктива малого збільшення)
3.3.	Привести конденсор у робоче положення, трохи відкрити діафрагму.
3.4.	Навести бінокулярну насадку в робоче положення
3.5.	Увімкнути освітлювач
4. Робота на малому та середньому збільшенні:
4.1.	Покласти препарат на предметний столик покривним склом догори
4.2.	Рухом макрометричного гвинта знайти фокус слабкого збільшення
4.3.	Розглянути препарат, вибрати ділянку, яку слід вивчити при більшому збільшенні і помістити його в центр поля зору
4.4.	Не змінюючи фокуса (не піднімаючи тубуса), повернути револьверний пристрій та встановити сильніший об'єктив (40х).
4.5.	Підняти конденсор, відкрити діафрагму
4.6.	Сфокусувати об'єкт за допомогою мікрометричного гвинта шляхом його обертання на півоберта вперед чи назад
5. Завершення роботи
5.1.	Вимкнути світло, перевести револьвер на слабке збільшення, прибрати препарат із предметного столика, закрити діафрагму, опустити конденсор, опустити тубус, у бінокулярній насадці звести окуляри разом
5.2.	Вийняти шнур із розетки, акуратно обмотати його навколо основи мікроскопа. Одягти чохол на мікроскоп.
5.3.

3- приготовлений лаборант препарат є неякісним, т.к. містить глибки темно-коричневого кольору. Цей артефакт (зерна пігменту) утворився внаслідок реакції кислого формаліну з гемоглобіном.

4- Для видалення пігменту зрізи необхідно помістити:

· В 1-5% розчин аміаку (на 15-20 хв),

· 70% спирт (на 15-20 хв),

· 1% КОН у 80 ° спирті (10 хв).

Потім зрізи необхідно промити водою.

Забарвивши депарафінізований зріз гематоксиліном, медичний лабораторний технік залишився незадоволеним результатом: тло препарату було темним, структура ядер не проглядалася.

ЗАВДАННЯ 1

1. Вкажіть, який етап фарбування препаратів було виконано незадовільно; підготуйте робоче місце для фарбування препаратів
2. Підготуйте препарат до фарбування
3. Пофарбуйте препарат гематоксиліном та еозином
4. Розкажіть про правила архівування гістологічних препаратів

1. Темний фон препарату та нечітка структура ядер можуть з'явитися при поганому диференціюванні препарату солянокислим спиртом.

2-3 депарафінування та фарбування препаратів гематоксиліном-еозином

1.	Вимити та осушити руки
2.	Одягти рукавички
3.Підготувати робоче місце:
3.1.	Підготувати лоток, серветки, пісочний годинник, парфінові зрізи.
3.2.	Помістити на лоток штатив
3.3.	Скласти батарею для депарафінування, розташувавши розчини в наступній послідовності: ксилол (1) – ксилол (2) – спирт 100 – спирт 96 (1) – спирт 96 (2) – спирт 70 дист.вода
3.4.	Скласти батарею для фарбування, розташувавши розчини в наступній послідовності: дист.вода-гематоксилін-дист.вода-водопровідна вода-еозин-дист.вода
4. депарафінування
4.1.	Помістити зрізи в розчин ксилолу 1-2 на 3-5 хв на кожен
4.2.	Провести зрізи по батареї спиртів низхідної концентрації
4.3.	Сполоснути зрізи у дистильованій воді
5. фарбування зрізів гематоксиліном-еозином
5.1.	депарафіновані зрізи перенести в дистильовану воду
5.2.	пофарбувати гематоксиліном 2-5 хв
5.3.	промити дистильованою водою - 1 хв.
5.4.	промити водопровідною водою - 3-5 хв
5.5.	пофарбувати 1% розчином еозину – 0,5-1 хв.
5.6.	швидко промити дистильованою водою
6. Завершення роботи
6.1.	Розібрати батарею, бюкси з розчинами скласти на місце, утилізувати використані серветки
6.2.	Рукавички зняти та помістити в дезрозчин

4. архівування

Після завершення вирізки шматочків із операційного матеріалу, медичний лабораторний технік помістив усі інструменти, використані рукавички та залишки матеріалу у дезрозчин.

ЗАВДАННЯ 1

1. Дайте оцінку діям лаборанта та підготуйте робоче місце для взяття операційного матеріалу
2. Проведіть маркування та фіксацію матеріалу
3. Проведіть дезінфекцію використаного посуду та інструментарію
4. Розкажіть про правила архівування матеріалу, що залишився після дослідження (вологий архів)

1. Медичний лабораторний технік вчинив неправильно. Матеріал, що залишився, слід помістити в 10% нейтральний формалін (вологий архів).

2-3-взяття, маркування та фіксація матеріалу

1.	Вимити та осушити руки
2.	Одягти рукавички
3.1.	розстелити клейонку (поставити лоток)
3.2.	поставити на клейонку (лоток): ємність із широким горлом та притертою кришкою, заповнену 10% нейтральним формаліном; гістологічні касети, пінцет
4. маркування та фіксація матеріалу
4.1.	відкрити касету (покласти на лоток марлеву серветку)
4.2.	помістити в касету (на серветку) вирізаний лікарем шматочок матеріалу
4.3.	Підготувати паперову етикетку: простим олівцем написати порядковий номер, під яким матеріал зареєстрований у журналі
4.4.	Етикетку помістити до касети (на серветку з матеріалом)
4.5.	Закрити касету, при цьому має лунати клацання (зав'язати серветку).
4.6.	Помістіть касету (серветку) із матеріалом у ємність широким горлом, заповнену 10% нейтральним формаліном. При цьому обсяг фіксатора повинен перевищувати обсяг фіксованого матеріалу в 10-20 разів
4.7.	Закрити кришкою ємність і залишити під витяжкою на час, необхідний для фіксації (1 добу).
5. Завершення роботи
5.1.	використані інструменти скласти у ємність для дезінфекції, експозиція 1 год.
5.2.	клейонку (лоток) протерти ганчіркою, змоченою в дез.
5.3.	скинути ганчір'я в ємність з дезрозчином, експозиція 1 год.
5.4.	зняти гумові рукавички, занурити їх у ємність із дезрозчином, експозиція 1 год.

4. вологий архів

Медичний лабораторний технік отримав завдання залити у парафін операційний матеріал. З цією метою він використав наступний алгоритм дій: спирт 70% - спирт 96% (1) - спирт 96% (2) - спирт 100% - ксилол (1) - ксилол (2) - суміш ксилолу з парафіном (при 37 ° С) - Парафін (56 º С).

2. Продемонструйте техніку зневоднення матеріалу

3. Залийте матеріал у парафін

4. Розкажіть про правила архівування парафінових блоків

Медичний лабораторний технік використав правильний алгоритм дій

1-3 ущільнення матеріалу та заливання його в парафін.

1.	Вимити та осушити руки
2.	Одягти рукавички
3. Підготувати робоче місце:
3.1.	Підготувати батарею для зневоднення та ущільнення матеріалу
3.2.	Підготувати інструменти.
3.3.	Підготувати форми для заливання.
3.4.	Підготувати ємність із холодною водою для швидкого охолодження парафіну.
4. зневоднення
4.1.	Промитий матеріал помістити у 70% спирт.
4.2.	Продемонструвати, як матеріал переносять з одного реактиву до іншого, вказати час витримки у кожному реактиві.
5. Заливання матеріалу
5.1.	Дістати з термостата ємності з парафіном (2-а порція) та заливальний парафін.
5.2.	Розмістити ємності з парафіном на водяну баню.
5.3.	Теплим пінцетом перенести матеріал у центр паперової форми.
5.4.	Заповнити форму парафіном для заливки.
5.5.	Форми до країв занурити в холодну воду, поки на поверхні не з'явиться плівка.
5.6.	Повністю занурити форму у воду.
6. Завершення роботи
6.1.	Забрати ємності з парафіном в термостат.
6.2.	Утилізувати касету (марлю).
6.3.	Рукавички зняти та помістити в дезрозчин.

4.архівування

При виготовленні парафінових зрізів із блоку шкіри з волоссям медичний лабораторний технік відчував утруднення: зрізи покривалися смугами, розривалися.

1. Назвіть можливі причини труднощі у різанні блоку.

2. Чи можливе виправлення цього артефакту?

3. Техніка нанесення адгезивного середовища на предметне скло. Що можна використовувати як адгезивний матеріал при наклеюванні зрізів на предметне скло?

1. Причинами виникнення розривів та смуг на парафінових середовищах можуть бути:

· Дефект ріжучої поверхні

· Налипання парафіну на ріжучий край леза

· Неякісний парафін

2. Для усунення артефакту слід:

· Трохи зрушити лезо і подивитися, чи змінилося разом із цим розташування подряпин на зрізі. Якщо подряпини теж змістилися, замініть лезо.

· Очистіть лезо за допомогою щітки, змоченої в ксилолі. Під час чищення щітку слід вести вгору у напрямку від ріжучого краю, але в жодному разі не ведіть її вниз на ріжучий край.

· Дубль зразка слід піддати декальцифікації або перезалити матеріал.

3. Як адгезивний матеріал при наклеюванні зрізів на предметне скло можна використовувати готовий желатиновий адгезив для зрізів або приготувати самостійно адгезивне середовище на основі сироватки або яєчного білка з гліцерином.

Приступивши до фарбування парафінового зрізу зі шматочка щитовидної залози, медичний лабораторний технік забув провести депарафінізацію.

1. Чи може бути забарвлений недепарафінізований препарат? З якою метою проводитися депарафінізація?

2. Чи можлива корекція такої помилки?

3. Види найчастіше використовуваних гістологічних барвників.

1. Недепарафінізований препарат не може бути забарвлений. Депарафінізація використовується для видалення парафіну зі зрізу. Депарафінізований препарат можна висушити та зберігати. Розчинник парафіну – ксилол слід змінювати після обробки 100-200 зрізів.

2. Корекція неможлива.

3. У гістологічній практиці застосовують основні (лужні), кислотні та нейтральні барвники. Основні барвники забарвлюють структури кислої природи. Насамперед ядра клітин (ДНК, хроматин, ядрова РНК). Це фарбування називають базофільним. Серед цих барвників найпоширеніший ядерний барвник – гематоксилін. Структури цитоплазми з основними властивостями фарбуються кислими барвниками. Найпоширеніший кислий барвник – еозин. Серед нейтральних барвників найбільш вживаний барвник - Судан (Судан III, IV), що розчиняється в жирах. Його використовують для виявлення жирових включень у цитоплазмі клітин.

Ознаки	Прокаріоти	Еукаріоти
1. Морфологічно оформлене та відокремлене від цитоплазми ядерною оболонкою ядро.
2. Число хромосом
3. Хромосоми кільцеві
4. Хромосоми лінійні
5. Константа седиментації рибосом
6. Локалізація рибосом: - розсіяні в цитоплазмі; - прикріплені до ендоплазматичного ретикулуму.
7. Апарат Гольджі
8. Лізосоми
9. Вакуолі, оточені мембраною
10. Газові вакуолі, не оточені мембраною
11. Пероксисоми
12. Мітохондрії
13. Пластиди (у фототрофів)
14. Мезосоми
15. Система мікротрубочок
16. Джгутики (якщо присутні): - діаметр - у поперечнику мають характерне розташування мікротрубочок «9+2»
17. У складі мембран присутні: - розгалужені та циклопропанові жирні кислоти - поліненасичені жирні кислоти та стероли
18. У складі клітинних стінок присутні: - пептидоглікан (муреїн, псевдомуреїн) - тейхоєві кислоти - ліпополісахариди - полісахариди (целюлоза, хітин)
19. Розмноження клітин відбувається шляхом: -простого поділу - мітозу
20. Характерним є поділ протопласту внутрішніми мембранами на функціонально різні відсіки.
21. Цитоскелет тривимірний, включає мікротрубочки, проміжні та актинові філаменти
22. Зв'язок між компартментами здійснюється за рахунок циклозу, ендо та екзоцитозу
23. Наявність ендоспор

5.4. Підсумковий контроль знань:

- Запитання по темі заняття:

1. Пояснити сутність науки «Біологія» та її значення у медицині.

2. Довести, чому Людину як об'єкта медицини ми вивчаємо, насамперед, як представника тваринного світу.

3. Система класифікації живих організмів.

4. Уявлення про неклітинні та клітинні форми життя.

5. Поняття про про- та еукаріоти.

6. Різноманітність клітинних форм життя.

7. Уявлення про збільшувальні прилади, історію їх відкриття та вдосконалення.

8. Значення збільшувальних приладів у розвитку біології та медицини.

- Тестові завдання:

1. Предметний столик відноситься до частини мікроскопа

1) механічною

2) оптичної

3) освітлювальною

4) препарувальною

2. Компоненти освітлювальної частини мікроскопа розташовуються

1) у гніздах револьвера

2) у верхній частині тубуса

3) біля основи лапки штатива

4) на предметному столику

3. Призначення макрометричного гвинта

1) переміщення утримувача з окуляром у вертикальному напрямку

2) переміщення тримача з окуляром у горизонтальному напрямку

3) переміщення столика з об'єктом у вертикальному напрямку

4) переміщення столика з об'єктом у горизонтальному напрямку

4.Кратність збільшення окуляра мікроскопа «Біолам» може бути

5. Кратність збільшення імерсійного об'єктива

- Вирішення ситуаційних завдань:

Завдання №1

Постійний препарат вивчений на малому збільшенні, проте при переведенні на велике збільшення об'єкт не видно, навіть при корекції макро- та мікрометричним гвинтами та достатньому освітленні. Чи потрібно визначити, з чим це може бути пов'язано?

Завдання №2

Препарат поміщений на предметний столик мікроскопа, що має в основі лапки штатива дзеркало. В аудиторії слабке штучне світло. Об'єкт добре видно на малому збільшенні, проте при спробі його розглянути при збільшенні об'єктиву х40, у полі зору об'єкт не проглядається, видно темну пляму. Чи потрібно визначити, з чим це може бути пов'язано?

6. Домашнє завдання для з'ясування теми заняття(згідно з методичними вказівками для позааудиторної роботи з теми заняття)

1. Виготовлення мікропрепаратів представників прокаріотичних (бактеріальні клітини) та еукаріотичних організмів (нервові клітини, клітини шкірки цибулі).

- Обов'язкова

1. Біологія у 2 кн. Підручник для медицини. спец. вузів / за ред. В.Н Яригіна. М: Вища. шк., 2005.

2. Посібник до практичних занять з біології: навчальний посібник / за ред. В.В. Маркіна. М: Медицина, 2006.

- Додаткова

1. Загальна та медична генетика: навчальний посібник / ред. В.П. Щипків. М: Академія, 2003.

2. Гінтер Є.К. Медична генетика: підручник. М: Медицина, 2003.

3. Бочков Н.П. Клінічна генетика: підручник. М.: Геотар-Медіа, 2004.

4. Северцов А.С. Теорія еволюції. М: Владос, 2005.

5. Жімульов І.Ф. Загальна та молекулярна генетика: навчальний посібник. Новосибірськ: Сибуніверізд., 2007.

7. Григор'єв А.І. Екологія людини: підручник. М: Геотар-Медіа, 2008.

8. Чернова Н.М. Загальна екологія: підручник. М: Дрофа, 2004.

- Електронні ресурси

1. Електронна бібліотека з дисципліни Біологія. М: Російський лікар, 2003.

2. ІХС КрасДМУ

4. БД Медицина

5. БД Генії медицини

Надіслати свою гарну роботу до бази знань просто. Використовуйте форму нижче

Студенти, аспіранти, молоді вчені, які використовують базу знань у своєму навчанні та роботі, будуть вам дуже вдячні.

1. Загальна характеристика класу круглих хробаків.

2.Морфологічні особливості аскариди (зовнішня та внутрішня морфологія).

3.Морфологічні особливості дитячої гостриці, трихінели, кривоголовок, волосоголовець.

4. Цикли розвитку та шляхи зараження круглими хробаками.

5. Загальна характеристика та біологічне значення типу кільчастих черв'яків та їх представника – медичної п'явки.

Більшість нематод відноситься до геогельмінтів, і частина їх циклу розвитку (зазвичай яйце) проходить у ґрунті. Життєвий цикл проходить без метаморфозу, личинка кілька разів линяє під час розвитку. Особливістю життєвого циклу багатьох видів є необхідність для личинки у кисні для подальшого розвитку, у зв'язку з чим вони здійснюють специфічні міграції в організмі остаточного господаря.

Робота № 1. Особливості зовнішньої будови та статевого диморфізму круглих черв'яків на прикладі аскариди.

Сімейство: Ascarididae

Представник: Ascaris lumbricoides -Аскарида людська .

Нематоди характеризуються подовженим веретеноподібним тілом, круглим у перерізі. Тіло вкрите щільною кутикулою, що захищає тіло хробака. Аскариди мають чітко виражений статевий диморфізм у розмірах (самки більші – 20-40 см, самці – 15-20 см), задній кінець тіла самця загнутий і несе 2 спікули. Половий отвір самки на межі третини тіла з черевного боку, у самця пов'язаний з анальним отвором. На передньому кінці тіла аскариди є ротовий отвір у вигляді тригранної щілини, оточеної трьома губами.

Розглянути на вологих препаратах та демонстраційних матеріалах аскарид, замалюватизовнішній вигляд самця і самки, відзначити діагностичні особливості, розміри та статеві відмінності, вказати шляхи зараження. Запишіть систематику.

Робота №2. Внутрішня морфологія аскариди.

Розглянути вологі та тотальні препарати з поздовжнім та поперечним зрізом тіла аскариди. На поперечному зрізі добре видно покриває тіло кутикула, гіподерму з 4 валиками, в яких проходять канали видільної системи (в бічних) та нервові стовбури (в дорзальному та вентральному). Під шаром гіподерми добре видно чотири стрічки м'язів, розділених гіподермальними валиками. У центрі первинної порожнини тіла видно кишечник і кілька разів перерізана статева система – найменший діаметр мають яєчники, дещо більший із недорозвиненими яйцями – яйцеводи та найбільші зі сформованими яйцями – матка.

Замалюватипоперечний зріз аскариди та відзначити перелічені органи.

Робота № 3. Діагностичні ознаки та статевий диморфізм гострики.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Nemathelminthes - Круглі черви

Клас: Nematoda - Власне круглі черви

Сімейство: Oxyuridae

Представник: Enterobius vermicularis -Гостриця дитяча .

Кустриця дитяча має невеликі розміри (самка до 10 мм, самець до 5 мм), задній кінець тіла самця закручений на черевну сторону. На передньому кінці тіла навколо рота знаходиться везикула – здуття, що дозволяє прикріплюватися до стінки кишечника, стравохід має смоктальне розширення – бульбус.

Розглянути під малим збільшенням мікроскопа самця і самку гостриці, замалювати, вказавши діагностичні відмінності - везикулу, бульбус, розміри та ознаки статевого диморфізму Запишіть систематику.

Робота № 4. Діагностичні ознаки власоголова.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Nemathelminthes - Круглі черви

Клас: Nematoda - Власне круглі черви

Сімейство: Trichocephalidae

Представник: Trichocephalus trichiurus - Власоголов .

Власоголов має характерну зовнішність - передня частина тіла хробака волосоподібна, в 3-4 рази тонша за задню і служить для закріплення хробака в стінці кишечника. Розміри самки - 35-50 мм, самець трохи менше - 30-40 мм, задня частина тіла закручена.

Розглянути постійний препарат волосоголовця. Замалюватисамця і самку, відзначити діагностичні ознаки - передня частина волосоподібна частина тіла, розміри, вказати систематику.

Робота №5. Діагностичні ознаки кривоголовок.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Nemathelminthes - Круглі черви

Клас: Nematoda - Власне круглі черви

Сімейство: Ancylostomatidae

Представник: Ancylostoma duodenale -Анкілостома .

Представник: Necator americanus- Деякий американський.

Вивчити препарати з анкілостомою та деяким під великим збільшенням мікроскопа. Розглянути та замалюватизагнутий передній кінець обох видів, вказати ротову капсулу, зуби у анкілостоми та пластинки у деякого, записати систематику.

Робота № 6. Будова та цикл розвитку трихінели.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Nemathelminthes - Круглі черви

Клас: Nematoda - Власне круглі черви

Сімейство: Trichinellidae

Представник: Trichinella spiralis -Трихінелла .

Трихінелла, на відміну від більшості нематод, є типовим біогельмінтом – весь її розвиток відбувається в організмі господарів без виходу у зовнішнє середовище. При поїданні ураженого трихінелою м'яса, личинка в кишечнику закінчує розвиток, після запліднення самка народжує живих личинок, які потрапляють у кровотік і розносяться по всьому організму, локалізуючись у м'язах. Інцистовані личинки покриваються сполучнотканинною капсулою, яка з часом обвапнюється.

Розглянути препарат із личинкою трихінели у м'язах. Личинка в скрученому стані розташовується всередині овальної капсули, що має розміри 03-05 мм. Замалюватипрепарат, відзначити личинку та капсулу, описати шляхи зараження. Запишіть систематику.

Робота № 7. Поперечний зріз медичної п'явки.

Систематика (по: Догель, 1981):

Тип: Annelida - Кільчасті черв'яки

Клас: Hyrudinea - П'явки

Сімейство: Hyrudinidae

Представник: Hyrudo medicinalis - Медична п'явка .

Розглянути на вологих препаратах та демонстраційних матеріалах зовнішню будову медичної п'явки, замалюватикольоровими олівцями, відзначити сегментоване тіло, наявність двох присосок та особливості забарвлення, що служать важливою діагностичною ознакою. На малому збільшенні мікроскопа розглянути поперечний розріз, замалювати, відзначити шкірний епітелій, м'язові шари, кишені кишечника, паренхіму та лакуни. Запишіть систематику.

Робота № 8. Вирішення ситуаційних задач.

1. У ході роботи кваліфікованої бригади «Лікарів без кордонів» у невеликому африканському містечку виявлено хворих з діагнозами «лоа-лоаз», «бругіаз» та «онхоцеркоз» у 2,5 рази більше, ніж за даними місцевих лікарів, які проводили аналізи біологічного матеріалу у різний час доби. Які були причини розбіжності в діагностиці? Поясніть причини та напишіть систематику збудників.

2. У лісі групою мисливців було видобуто кабана. Незважаючи на термічну кулінарну обробку у двох людей через 30 днів піднялася висока температура, з'явилися головні та м'язові болі, кишкові розлади, загальна слабкість. Яке захворювання можна припустити в цьому випадку? Назвати можливі шляхи зараження людини цим захворюванням та заходи профілактики.

3. У дитини 8 років такі симптоми: поганий сон, дратівливість, розчісування в анальній ділянці. Який діагноз можна припускати?

4. У хворого на біль у животі, нудота, кишкова непрохідність. Відомо, що хворий - садівник-аматор, який використовує як добрива людські екскременти. Який гельмінтоз можна припускати?

5. Часто в шахтах спостерігаються антисанітарні умови, і відходи бувають сильно забруднені фекаліями. Через високу температуру багато шахтарів ходять босоніж. Який гельмінтоз поширений у цієї групи населення?

Заняття 4.5Медичний гельмінтологія. (гельмінтоовоскопія)

Мета заняття:вивчити діагностичні ознаки яєць різних видів гельмінтів та їх адаптивні особливості до виходу та розселення у зовнішньому середовищі.

Матеріали та обладнання:

1. Мікроскопи

2. Мікропрепарати: суміш яєць гельмінтів; яйце печінкової двоустки; яйце котячої двоустки; яйце ланцетоподібної двоустки; яйце гострики; яйце карликового ціп'яка; яйце волосоголовець; яйце аскариди; яйце ціп'яків; яйця шостистом

3. Визначні таблиці

4. Таблиці постійні.

Запитання для самопідготовки:

1. Діагностичні ознаки яєць плоских та круглих черв'яків.

2.Адаптація яєць гельмінтів до виходу, розселення та збереження у зовнішньому середовищі.

3. Методи діагностики гельмінтозів.

Найчастіше розпізнавання гельмінтозів на підставі клінічних проявів утруднено. Найважливішою складовою діагностики гельмінтозів є гельмінтоовоскопія. Гельмінтоовоскопія, або овогельмінтоскопія - виявлення яєць гельмінтів у різних виділеннях організму, головним чином у фекаліях, сечі, зіскрібках періанальних складок та ін.

Яйця гельмінтів добре адаптовані до виживання та розселення у зовнішньому середовищі, при цьому, залежно від особливостей життєвого циклу, вони мають різні морфологічні адаптації. Адаптації відбиваються на зовнішній будові яєць, що дозволяє ефективно ідентифікувати їх видову приналежність.

Робота №1. Адаптація яєць до виходу личинок у водне середовище.

Розглянути під мікроскопом та замалювати:

А) яйця печінкової двоустки;

В) яйця широкого лентеця.

Відзначити наявність кришечки, вказати розміри.

Робота № 2. Адаптація яєць до виходу личинок у кишечник проміжного господаря – водного чи наземного молюска.

Ряд видів сисун не мають вільно пересувається стадії, інвазивної для першого проміжного господаря. Яйце проковтує перший проміжний господар – черевоногий молюск, у кишечнику якого відбувається подальший розвиток.

А). Розглянути під мікроскопом яйця котячої двоустки. Кришечка яйця нефункціональна, мірацидій залишає яйце під дією травних ферментів у кишечнику господаря. Замалювати яйце, відзначити кришечку, вказати розміри.

У). Розглянути під мікроскопом яйця ланцетоподібної двоустки. Розвиток цього виду відбувається на землі, тому яйця мають щільну оболонку та темне забарвлення, кришечка не відкривається. Замалювати, вказавши діагностичні ознаки та розміри.

Робота № 3. Адаптація яєць до розвитку у наземному середовищі.

Яйця багатьох видів стрічкових черв'яків і нематод здатні збережуться протягом тривалого часу в ґрунті, доки їх не проковтне остаточний господар. Такі яйця мають щільну оболонку, що захищає їхню відмінність від впливу навколишнього середовища.

Розглянути під мікроскопом, замалювати та вказати основні діагностичні ознаки та розміри:

а) яйця власоглава б) яйця аскариди в) яйця теніїд.

Робота № 4. Морфологічні особливості яєць хробаків із короткочасним періодом розвитку у зовнішньому середовищі.

Ряд видів має короткий період розвитку яйця (близько 6 годин у гостриці), після якого воно стає інвазивним. Яйця деяких видів (карликового ціп'яка) можуть дозрівати до того моменту, як покинуть кишечник і здатні до аутоінвазії. Для таких яєць характерна тонка прозора оболонка.

А). Розглянути під мікроскопом яйця гострики. Замалювати і відзначити асиметричну форму та прозору оболонку. Вказати розміри.

У). Розглянути яйця карликового ціп'яка. Замалювати, вказати розміри та відзначити наявність тонкої прозорої оболонки.

Робота №5. Адаптація яєць до виходу з кровоносного русла.

Розглянути під мікроскопом яйця шистосом, замалювати, наголосивши на наявності шипа, вказати розміри.

Робота №6. Визначення яєць гельмінтів.

На препараті «суміш яєць гельмінтів» знайти і користуючись наведеною нижче таблицею, визначити яйця всіх представлених видів.

1(8). На верхньому полюсі яйця є кришечка.

2(3). Довжина яєць понад 100 мкм. Яйця овальні, великі (130-145x70-85 мкм), жовтувато-коричневого кольору. Оболонка товста, гладка. Яйцеклітина оточена численними жовтковими клітинами. На нижньому полюсі є плоский горбок. - Fasciola hepatica .

3(2). Довжина яєць менше 100 мкм.

4(5). Яйця з товстою темно-бурою оболонкою, без горбка на нижньому полюсі, асиметричні, 38-45x25-30 мкм. Містять зрілий мірацидій із двома великими клітинами. - Dicrocoelium lanceatum .

5(4). Яйця світло-жовті або світло-сірі, на нижньому полюсі є горбок.

6(7). Яйця дрібні, 26-32x11-15 мкм, відношення довжини до ширини 2,5:1, блідо-жовтуватого або сірого кольору. Верхня частина яйця трохи звужена. Верхня структура дрібнозерниста. - Opisthorchis felineus .

7(6). Розміри яєць 68-75×45-50 мкм, відношення довжини до ширини 1,5:1. Яйця жовті, широко овальні. Оболонка відносно гладка, тонка, з невеликим горбком, розташованим трохи ексцентрично на нижньому полюсі. Яйцеклітина оточена жовтковими клітинами. - Diphyllobothrium latum .

8(1). На верхньому полюсі яйця кришечка відсутня.

9(14). На яйці є товстий шпилька.

10(13). Яйця овальні, витягнуті, великі (150х60-70 мкм), шип добре розвинений.

11(12). Шип розташований термінально. - S chistosoma haematobium.

12(11). Гачкоподібний шип розташований збоку яйця. - Schistosoma mansoni.

13(10). Яйця широкоовальні, дрібніші (80х60 мкм), шип бічний рудиментарний. - Schistosoma japonicum.

14(9). Шип на яйці відсутній.

15(16). Яйця асиметричні, довгасті, одна сторона яйця помітно сплощена, інша опукла, розміри 50-60x30-32 мкм. Оболонка тонка, гладка, безбарвна. - Enterobius vermicularis .

16(15). Симетричні яйця.

17(24). Яйця не містять ембріональних гачків.

18(19). Яйця лимонні, оболонка темно-коричневого кольору, товста. На обох полюсах світлозабарвлені пробкоподібні утворення. Розміри 50-54x23-26 мкм. - Trichocephalus trichiurus .

19(18). Яйця широкоовальні, пробкоподібні утворення на полюсах відсутні.

20(23). Яйця бурого кольору, оболонка яйця щільна, горбиста.

21(22). Зовнішня оболонка великогорбиста, товста, коричнева. Вміст яйця не щільно прилягає до шкаралупи. Яйця овальні, рідше кулясті, 50-70x40-50 мкм. Яйцеклітина дрібнозерниста, куляста. - Ascaris lumbricoides .

22(21). Зовнішня оболонка дрібнобугриста, менш товста, яйце частіше подовжене, 50-100x40-50 мкм. Вміст яйця щільно прилягає до шкаралупи, весь внутрішній простір заповнений великою кількістю жовткових зерен. Ascaris lumbricoides (Незапліднене яйце).

23(20). Оболонка яйця тонка, прозора, розмір 56-76x34-40 мкм. - Сім. Ancylostomatidae

24(17). Яйця кулясті, містять 6 ембріональних крил.

25(26). Оболонка яйця жовто-коричнева, товста, з радіальною смугастістю. Розміри 31-40×20-30 мкм. - Сім. Taeniidae(Яйця різних видів зовні невиразні).

26(25). Оболонка яйця безбарвна, тонка, гладка.

27(28). Яйця поодинокі, широкоовальні або округлі, 36-43х45-53 мкм, з двома прозорими оболонками, між якими проходять нитки, що звиваються. - Hymenolepis Папа.

28(27). Яйця зібрані у пакети по 5-30 штук, нитки між оболонками відсутні. - Dipylidium caninum.

1. У хворого при копрологічних дослідженнях виявлено яйця розміром 40 мкм, з товстою радіально смугастою оболонкою, кулястої форми, усередині 6 гачків, також виявлені членики з маткою, що має 7-14 відгалужень. Який діагноз лікар поставить хворому?

2. При копрологічних дослідженнях у хворого виявлено такі яйця: 50 мкм, овальні з подвійною ніжною прозорою оболонкою, усередині онкологічної гачки. Який гельмінтоз можна припустити?

3. У хворого при копрологічних дослідженнях виявлено яйця: розмір 50 мкм, лимоноподібна форма, на полюсах пробкоподібні утворення. Назвіть вигляд гельмінту.

4. У хворого - затятого рибалки виявлено яйця з кришечкою, 70 мм у довжину, з гладкою, тонкою оболонкою. Який можна встановити діагноз хворому?

5. У хворого виявлені яйця дрібного розміру (25 мкм), блідо-жовтого кольору з тонкою шкаралупою і кришечкою, що не функціонує в одязі. Який діагноз буде поставлено з цих даних?

Заняття4.6 Медицьинська арахнологія

Матеріали та обладнання:

1. Мікроскопи

2. Мікропрепарати кліщів: іксодових; аргазові; гамазових; коростяного сверблячка

3. Сухі та вологі колекції павукоподібних.

4. Таблиці постійні.

Запитання для самопідготовки:

1. Загальна характеристика типу членистоногих.

2. Характерні риси класу павукоподібних.

3. Отруйні павукоподібні.

4. Діагностичні ознаки та епідеміологічне значення іксодових, аргазових, гамазових, пилових кліщів, коростяного сверблячки.

Павукоподібні - велике угруповання членистоногих тварин, що повною мірою освоїли наземне середовище проживання. Для павукоподібних характерна складна будова та наявність багатьох ароморфозів, що дозволяють виживати у наземному середовищі. До них відносяться поява епікутикули – третього шару покривів, що перешкоджає випаровуванню вологи, специфічних органів виділення – мальпігієвих судин та органів дихання – легенів та трахей. В процесі еволюційного розвитку павукоподібних, як і в інших групах членистоногих, спостерігається явище олігомеризації гомологічних органів, пов'язане зі скороченням числа сегментів та парних органів у високоорганізованих представників. У той же час, для деяких груп павукоподібних характерне явище мініатюризації, що дозволяє досягати високої чисельності та займати недоступні більшим видам ніші. Дане явище пов'язане зі спрощенням будови та редукцією багатьох органів та найбільш повно виражене у кліщів.

Робота №1. Діагностичні ознаки іксодових кліщів.

Багато видів іксодових кліщів здатні харчуватися на людині і є важливими природними резервуарами та переносниками різних інфекцій.

А. Таїжний кліщ.

Представник: Ixodes persulcatus -Таїжний кліщ.

Тайговий кліщ широко поширений у тайгових лісах Сибіру та півночі європейської частини Росії. На південь в європейському регіоні він заміщається своїм виглядом - собачим кліщем, дуже схожим по морфології. Від інших видів тайговий кліщ відрізняється одноколірним чорно-бурим спинним щитком, анальною борозенкою, що обгинає анус спереду та відсутністю очей. У тайгового кліща виражений статевий диморфізм, що полягає в розмірах (самки більші за самців) і розташування спинного щитка.

Таїжний кліщ має важливе епідеміологічне значення як специфічний переносник кліщового енцефаліту та хвороби Лайма.

Розглянути на постійному препараті самця і самку кліща, замалюватисамця і самку зі спинного боку, і самку з черевного боку. Вказати діагностичні ознаки – колір, відсутність очей, анальна борозенка огинає анус спереду, та статеві відмінності – у самця спинний щиток покриває все тіло, у самки – лише передню частину. Зазначити епідеміологічне значення, записати систематику.

В. Кліщі роду Dermacentor.

Систематика (за: Захваткін, 2012):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Arachnida - Павукоподібні

Сімейство: Ixodidae - Іксодові

Представник: Dermacentor marginatus- Пасовищний кліщ.

Представник: Dermacentor reticulatus(синонім Dermacentorpictus) -Луговий кліщ.

Кліщі роду Dermacentorвідрізняються наявністю очей, перламутровим щитком, фістонами на задньому кінці черевця. Епідеміологічне значення – переносник збудників омської геморагічної лихоманки, кліщового енцефаліту, туляремії та інших інфекцій.

Розглянути на препаратах кліщів роду Dermacentor, записати діагностичні ознаки, вказати епідеміологічне значення

С. Кліщі родуHyalomma.

Систематика (за: Захваткін, 2012):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Arachnida - Павукоподібні

Сімейство: Ixodidae - Іксодові

Представник: Hyalomma marginatum.

Представники роду схожі з пасовищним та лучним кліщем, проте добре більшими розмірами, одноколірним щитком, довгими пальпами та великими, добре помітними очима. Розміри ситої самки можуть перевищувати 2 сантиметри. Hyalommaнаселяє південні регіони, зустрічаючись у пустелях та степах. Hyalomma marginatumє переносником кримської геморагічної лихоманки. Розглянути на препаратах хіалому, записати діагностичні ознаки, вказати епідеміологічне значення.

Робота №2. Особливості розвитку іксодових кліщів.

Цикл розвитку іксодових кліщів включає наступні стадії: яйце, личинку, німфу, статевозрілого кліща. Личинки та німфи відрізняються меншими розмірами та харчуються на дрібних ссавців, від чисельності яких залежить і чисельність усієї популяції кліщів.

А.Вивчити на малому збільшенні мікроскопа личинку кліща. Для личинок характерні дрібні розміри, три пари кінцівок, нерозвинені статеві органи. Описати будову та діагностичні ознаки личинок.

Ст.Розглянути будову німфи тайгового кліща. Німфи іксодових кліщів за будовою схожі з голодними самками, але мають набагато менші розміри. Статеві органи недорозвинені. Описати німфу тайгового кліща, вказати діагностичні ознаки.

Робота №3. Діагностичні ознаки аргасових кліщів.

Систематика (за: Захваткін, 2012):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Arachnida - Павукоподібні

Сімейство: Argasidae - Аргасові

Представник: Ornithodorus papillipes- селищний кліщ.

До сімейства аргасових відносяться найбільші представники кліщів. Види сімейства поширені у теплому кліматі, нападають на господарів уночі, селищний кліщ часто заселяє житла людини. Спинний щиток відсутній, шкіра зморшкувата чи бородавчаста. Ротові органи зміщені на вентральний бік і зверху не видно. У зв'язку з особливостями місцеперебування (багато видів зустрічаються в пустелях), аргасові кліщі здатні довго (протягом багатьох років) голодувати, харчування на господарі відбувається дуже швидко. Епідеміологічне значення: переносник кліщового зворотного тифу.

Розглянути кліщів під малим збільшенням мікроскопа або лупою, описати, замалювати, відзначивши діагностичні ознаки – великі розміри, вентральне розташування ротових органів, відсутність спинних щитків, зморшкуваті покриви. Вказати епідеміологічне значення.

Робота №4. Діагностичні ознаки гамазових кліщів.

Систематика (за: Захваткін, 2012):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Arachnida - Павукоподібні

Сімейство: Dermanyssidae

Представник: Dermanyssus gallinae- Курячий кліщ.

Представник: Ornithonyssus bacoti- щурий кліщ.

Розглянути на препараті гамазових кліщів, замалювати та відзначити діагностичні ознаки, вказати епідеміологічне значення.

Робота№ 5. Діагностичні ознаки коростяного сверблячки.

Систематика (за: Захваткін, 2012):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Arachnida - Павукоподібні

Сімейство: Sarcoptidae

Представник: Sarcoptes scabiei- Коростяний свербіж.

Розглянути на демонстрації коростяного сверблячка описати, відзначивши діагностичні ознаки, вказати медичне значення.

Робота№ 6. Пилові кліщі.

Систематика (по: Геніс, 1991):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Arachnida - Павукоподібні

Загін: Acariformes - Акаріформні кліщі

Сімейство: Pyroglyphidae

Представник: Dermatophagoidespteronyssinus- Пиловий кліщ.

Пилові кліщі зустрічаються в оселі людини, де мешкають у килимах, м'яких меблів, постільній білизні. Харчуються частинками епідермісу людини, що відшарувалися, і домашніх тварин. Мають дуже дрібні розміри (0,1-0,5 мм). Продукти життєдіяльності пилових кліщів спричиняють численні алергічні реакції. Розглянути на демонстрації зображення пилових кліщів, описати, вказати медичне значення.

Робота № 7. Вирішення ситуаційних задач.

1. Чоловік звернувся зі скаргами на сильний свербіж, найбільш виражений між пальцями, внизу живота та в паху. Зуб різко посилювався вночі. Назвіть причину захворювання та шляхи передачі.

2. Жінка, що розводить курей, страждає від дерматиту та сильної сверблячки. Яка можлива причина цього захворювання?

3. Чоловік, що подорожує пустелею в Середню Азію, зупинився на ночівлю в невеликій печері. На ранок він виявив, що його тіло вкрите укусами, на місці яких утворилися бульбашки, заповнені кров'янистою рідиною. Напад кого зазнав мандрівник? Чим небезпечні укуси цих тварин?

4. Турист у тайзі виявив на собі кліща, що присмоктався, з однобарвним темним щитком, що не повністю покриває тіло зверху. За кілька днів навколо місця укусу утворилося кільцеподібне почервоніння. Поряд із цим, у туриста підвищилася температура, з'явився головний біль та сильна слабкість. Назвіть вид кліща та захворювання, яким заразився турист.

5. Навесні, прогулюючись по узліссі, чоловік виявив на собі кліща, що присмоктався, з перламутровим щитком і фестончастим заднім краєм тіла. Що це за кліщ, яке його епідеміологічне значення?

Заняття4.7 Медична ентомологія

Матеріали та обладнання:

1. Мікроскопи

2. Мікропрепарати: личинки комарів; лялечки комарів; голови імаго звичайного та малярійного комарів; яйця малярійного комара; москіти; воші; блохи; клоп

3. Сухі колекції комах

4. Таблиці постійні.

Запитання для самопідготовки:

1. Загальна характеристика комах.

2. Медичне значення синантропних видів комах.

3. Діагностичні ознаки будови імаго, яєць та личинок звичайного та малярійного комарів.

4.Епідеміологічне значення компонентів гнусу.

5. Морфологічні особливості імаго синантропних мух та мух – збудників факультативних та облігатних міазів.

6. Особливості морфології та епідеміологічне значення вошей, бліх, постільного клопа.

Комахи - найбільш успішна група тварин, що має найбільше серед усіх живих організмів число видів і зайняла всі можливі ніші в наземно-повітряному, ґрунтовому та прісноводному середовищі. Всі комахи мають три відділи тіла – голову, груди та черевце. Голова несе пару антен і ротові кінцівки, грудний відділ, що складається з трьох сегментів - три пари кінцівок і у більшості представників одну або дві пари крил, черевце позбавлене кінцівок і служить вмістилищем внутрішніх органів. Наявність крил дозволило комахам зайняти масу раніше вільних ніш і стати домінуючою групою в більшості наземних екосистем.

Для комах характерна складна будова, адаптована до проживання в наземно-повітряному середовищі, часто пов'язаному з нестачею вологи. Тіло комах покрите міцною тришаровою хітиновою кутикулою, яка відіграє роль зовнішнього скелета. Є складна м'язова система, що складається з поперечно-смугастих м'язових волокон, жирове тіло, що дозволяє запасати поживні речовини та довго обходиться без їжі. Видільна система (мальпігієві судини) дозволяють виробити продукти обміну без втрати вологи. Складно диференційована нервова система з головним мозком, що складається із трьох основних відділів, забезпечує складну поведінку.

Розвиток комах проходить з метаморфозом - неповним (геміметаболія) - при якому личинка подібна до імаго і через ряд послідовних линок стає дорослою комахою, властивою більш примітивним формам. Повне перетворення (голометаболія) притаманно більш еволюційно просунутих загонів, у циклі розвитку є стадія лялечки, у якій відбувається докорінне перетворення організму.

Робота № 1. Особливості будови та діагностичні ознаки імаго звичайного та малярійного комарів.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Insecta - Комахи

Загін: Diptera - Двокрилі

Сімейство: Culicidae - Комарі

Представник: Culex pipiens- Звичайний комар

Представник: Anopheles maculipennis- Малярійний комар.

Кровосмоктуючі комарі мають найбільше значення серед двокрилих як переносники збудників багатьох захворювань. Малярійні комарі роду Anopheles передають збудників малярії, інші види є переносниками багатьох небезпечних інфекцій та інвазій: туляремії, філяріозів, жовтої лихоманки та багатьох інших.

А. Зовнішня будова комарів.

На колекційних матеріалах та демонстраційних таблицях розглянути зовнішню будову самки звичайного та малярійного комара. Відзначити розміри, фарбування. Описати відмінності у будові двох видів: ноги у малярійного комара довше, при харчуванні самка звичайного комара сидить паралельно поверхні або нахиливши черевце до тіла, самка анофелесу - піднявши кінець черевця похило догори.

В. Діагностичні відмінності у будову голови звичайного та малярійного комара.

Розглянути під мікроскопом голови самців та самок звичайного та малярійного комарів. Представники різних статей та видів мають значні відмінності, що дозволяють чітко діагностувати вигляд. Замалюватиголови комарів та вказати діагностичні ознаки:

Culex, самка - антени слабо опушені, щупики коротші за хоботка;

Сулекс, самець - антени сильно опушені, щупики довжиною з хоботок, що не потовщені на кінцях;

Anopheles, самка - щупики довжиною з хоботок, антени слабо опушені;

Anopheles, самець - антени сильно опушені, щупики на кінцях із булавоподібними потовщеннями.

Вказати епідеміологічне значення звичайного та малярійного комарів. Запишіть систематику.

Робота №2. Метаморфоз комарів.

Для комарів, як та інших представників двокрилих, характерне повне перетворення. Розвиток комара відбувається у невеликих стоячих водоймах, калюжах, куди самки відкладають яйця. Всі стадії розвитку малярійного та звичайного насекомих добре розрізняються, що дозволяє виявити місця виплоду анофелесів та використовувати численні засоби для боротьби з личинками.

А. Діагностичні особливості яєць комарів.

Розглянути на постійних препаратах яйця звичайного та малярійного комара, замалюватиі відзначити діагностичні відмінності: яйця малярійного комара відкладаються поодинці і мають з обох боків повітряні камери, яйця звичайного комара склеєні в плоти, без повітряних камер.

В. Діагностичні ознаки личинок.

При малому збільшенні мікроскопа розглянути препарати личинок звичайного та малярійного комарів, замалювати, відзначивши діагностичні ознаки: Culex- на останньому сегменті є дихальний сифон у формі трубки, личинки плавають головою під кутом до поверхні води; Anopheles- на останньому сегменті дихального сифону немає, є пара стигм на 8 сегменті черевця, личинки плавають паралельно поверхні води.

. Діагностичні особливості лялечок.

Розглянути на препаратах лялечок звичайного та малярійного комарів, відзначити діагностичні ознаки: у лялечок Сулекс- дихальний сифон циліндричної форми, у Anopheles- лійкоподібний.

Робота № 3. Діагностичні ознаки та епідеміологічне значення москітів.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Insecta - Комахи

Загін: Diptera - Двокрилі

Сімейство: Phlebotomidae - Москіти

Представник: Phlebotomus papatasi.

Москіти поширені у теплому кліматі. Це дрібні комахи, (розміри 1,5-3 мм), тіло опушене, колір жовтий або коричневий. Ротовий апарат колюче-смокчучий. Крила широкі, загострені на вершині. Розвиток відбувається на суші, у вологих місцях. Москіти мають важливе епідеміологічне значення як специфічні переносники збудників лихоманки паппатачі, шкірного та вісцерального лейшманіозу.

Вивчити постійний препарат москіту за малого збільшення мікроскопа. Описати, вказавши розміри та діагностичні ознаки. Зазначити епідеміологічне значення москітів, записати систематику.

Робота № 4. Морфологічні особливості та епідеміологічне значення кімнатної мухи та її метаморфоз.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Insecta - Комахи

Загін: Diptera - Двокрилі

Представник: Musca domestica - Кімнатна муха.

Кімнатна муха - типово синантропний вид двокрилих, поширений по всій території Росії. Має розміри 6-8 мм, сірого-бурого кольору, зверху на грудях 4 світліші поздовжні смуги, низ черевця жовтуватий. Розвиток мух відбувається з повним перетворенням, червоподібні личинки розвиваються у різноманітних гниючих субстратах. Ротовий апарат мух фільтруючого типу складається переважно з нижньої губи, верхні та нижні щелепи редуковані і має на кінці оральний диск з псевдотрахеями, що дозволяють ефективно відфільтровувати напіврідку їжу. Кімнатні мухи мають важливе епідеміологічне значення як переносники великої кількості інфекцій, переважно кишкових, таких як дизентерія, черевний тиф, холера, паратифи, туберкульоз, дифтерія, а також яйця гельмінтів.

Розглянути імаго кімнатної мухи, описати її, вказати діагностичні ознаки – забарвлення, розміри, тип ротового апарату. Замалюватилапку кімнатної мухи. Вказати епідеміологічне значення.

Робота № 5. Морфологічні особливості мух – збудників факультативних та облігатних міазів.

А. Мала кімнатна муха.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Insecta - Комахи

Загін: Diptera - Двокрилі

Сімейство: Muscidae - Справжні мухи

Представник: Fannia sp. - Мала кімнатна муха.

Доросла маленька муха має розміри 4-6 мм, темно-сірого кольору Личинки мають характерну зовнішність завдяки наявності великої кількості виростів. Імаго фанний, які часто зустрічаються в будинках, є переносниками низки інфекцій. Личинки малих кімнатних мух здатні викликати кишкові (при ковтанні яєць), ректальні, назальні, шкірні та офтальмоміази.

На колекційному матеріалі розглянути малу кімнатну муху, описати її, відзначити подібність у будові та фарбуванні з кімнатною мухою, як відмінність – менші розміри. Записати діагностичні ознаки, зазначити епідеміологічне значення.

Б. Вольфартова муха.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Insecta - Комахи

Загін: Diptera - Двокрилі

Сімейство: Sarcophagidae

Представник: Wohlfahrtia magnifica- Вольфартова муха.

Велика муха світло-сірого кольору має розміри 10-13 мм, на грудях три темні поздовжні смуги, на черевці - темні плями. Для них характерне живонародження, самка відкладає личинок на поверхню шкіри та слизові оболонки людини та інших тварин.

Вивчити на колекційних матеріалах будову імаго та личинки вольфартової мухи, вказати діагностичні ознаки.

Робота № 6. Діагностичні ознаки та епідеміологічне значення вошей.

А. Головна та платтяна воша – збудники педикульозу.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Insecta - Комахи

Загін: Phthiraptera

Сімейство: Pediculidae

Представник: Pediculus humanus humanus- Воша платтяна

Представник: Pediculus humanus capitis -Воша головна.

Платтяна і головна воші відносяться до одного виду і лабораторії можуть схрещуватися і давати потомство, причому на господарі не відбувається. На людині підвиди мають різну локалізацію та морфологічно різняться.

Головна воша локалізується у волосяному покриві голови людини, розміри самця – 2-3 мм, самки до 4 мм, сірого кольору, антени відносно короткі та товсті, є глибокі бічні вирізки на черевці між сегментами. Головна воша також може переносити збудників тифу.

Платтяна воша локалізується в одязі людини, там відкладає яйця, тимчасово переходячи на покриви тіла людини для харчування. Відрізняється більшими розмірами (самець 2-3,75 мм, самка до 4,75 мм), світло-сірим або білуватим забарвленням, антени тонші і довші, вирізки між члениками черевця менш глибокі. Платтяні воші є основними переносниками збудників висипного та зворотного тифу.

На постійних препаратах вивчити будову та замалюватиголовну та платтяну вошу. Відзначити діагностичні ознаки та епідеміологічне значення кожного підвиду.

В. Лобкова воша – збудник фтиріазу.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Insecta - Комахи

Загін: Phthiraptera

Сімейство: Pediculidae

Представник: Phthirus pubis- Лобкова воша.

Розглянути препарат лобкової воші під мікроскопом, замалювати, вказати морфологічні особливості

Робота № 7. Діагностичні ознаки бліх.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Insecta - Комахи

Загін: Siphonaptera

Сімейство: Pulicidae

Представник: Pulex irritans -Блоха людська.

На постійному препараті розглянути будову блохи. Замалювативказати діагностичні ознаки. Записати систематику та вказати епідеміологічне значення.

Робота № 8. Діагностичні ознаки постільного клопа.

Систематика (за: Яригін, 2008):

Тип: Arthropoda - Членистоногі

Клас: Insecta - Комахи

Загін: Hemiptera - Напівжорстокрилі

Сімейство: Cimicidae

Представник: Cimex lectularius- Постільний клоп.

Постільні клопи - комахи з неповним перетворенням, колюче-смокченим ротовим апаратом, представленим тричленистим хоботком, які живляться кров'ю людини та інших тварин. Тіло постільної клопа довжиною 5-8 мм, сильно сплощене у дорзовентральному напрямку. Харчування відбувається вночі, вдень клопи ховаються під шпалерами, у плінтусах, старих речах тощо. В організмі постільних клопів можуть досить тривалий час зберігатись збудники багатьох інфекцій, проте можливість їх передачі не доведена.

На постійному препараті розглянути та замалюватизовнішній вигляд постільного клопа, відзначити діагностичні ознаки.

Робота № 9. Вирішення ситуаційних задач.

1. У народі існує повір'я, що мухи восени, передчуючи загибель, зі злості починають кусати людей. Дайте відповідь, чи існують реальні передумови цього повір'я?

2. Археологи, які працювали в Середній Азії, спіймали піщанку, і сіли її в себе як вихованець. Через деякий час, вони виявили сліди укусів на тілі, що залишаються дрібною комахою, що добре стрибає. Яка комаха могла покусати археологів? Чим небезпечні ці укуси?

3. Існують дані, що останнім часом у зв'язку з модою на повну епіляцію інтимних місць цей вид комах у багатьох країнах перебуває на межі повного зникнення. Що це за комаха? Вкажіть його медичне значення.

4. У роки першої світової війни, в умовах, коли великі групи людей проводили тривалий час в окопах в умовах антисанітарії, регулярно траплялися епідемії висипного тифу та волинської лихоманки, відомої також під назвою «окопної лихоманки», яка нині не реєструється. Що було причиною епідемій?

5. Турист у Єгипті звернув увагу, що його вкусив комар з довгими ногами і плямистими крилами, який сидів при харчуванні, піднявши кінець черевця догори. Назвіть рід, до якого належить цей екземпляр. Чи варто побоюватися укусу цього комара?

Заняття 4.8Проміжний контроль за модульної одиниці 4 (колоквіум)

3. Вчення академіка Є.П. Павловського про природно-вогнищеві захворювання.

6. Загальна характеристика типу найпростіших, систематика та загальна характеристика класів.

7. Систематика, морфологічні особливості та цикли розвитку дизентерійної амеби. Патогенез амебіазу.

8. Систематика, особливості морфології, патогенез збудника вісцерального та шкірного лей- шманіозу, трипаносомозу. Природна осередковість.

9. Систематика 4-х видів малярійного плазмодія. Циклічність нападів лихоманки, її етіологія. Профілактика малярії.

10. Цикл розвитку малярійного плазмодія.

11. Патогенні інфузорії. Систематика, морфологічні особливості, шляхи зараження.

12. Загальна характеристика класу сисунів.

13. Цикли розвитку сисунів на прикладі котячої двоустки.

14. Особливості морфології та основні представники стрічкових хробаків.

15. Цикл розвитку стрічкових хробаків на прикладі свинячого та бичачого солітерів.

16. Типи фін стрічкових хробаків. Цистицеркоз у людини.

17. Особливості циклу розвитку широкого лентеця.

18. Загальна характеристика круглих хробаків.

19. Особливості циклів розвитку нематод – геогельмінтів. Значення аеробіозу яєць та личинок у профілактиці та патогенезі аскаридозу.

20. Особливості циклів розвитку нематод – біогельмінтів.

21. Загальна характеристика типу членистоногі.

22. Загальна характеристика класу павукоподібних.

23. Систематика, діагностичні ознаки представників іксодових кліщів, їхнє епідеміологічне значення.

24. Особливості метаморфозу іксодових кліщів та його значення у природній осередковості. Трансоваріальна та трансфазова передача збудників захворювання.

25. Систематичне становище, діагностичні ознаки, епідеміологічне значення аргазових кліщів.

26. Систематичне положення, діагностичні ознаки та епідеміологічне значення гамазових кліщів.

27. Систематика, морфологічні особливості, цикл розвитку коростяного сверблячки.

28. Загальна характеристика класу комах.

29. Кровосмоктуючі комарі. Морфологічна діагностика звичайного та малярійного комарів на різних фазах розвитку. Епідеміологічне значення.

30. Гнюс, його компоненти. Епідеміологічне значення представників гнусу.

...

Подібні документи

Будова тваринної клітки. Основні положення клітинної теорії, поняття про прокаріоти та еукаріоти. Структура цитоплазми та ендоплазматичний ретикулум. Хромосомний набір людини. Способи поділу клітини (амітоз, мітоз та мейоз) та її хімічний склад.

презентація , додано 09.10.2013


Основні фази клітинного циклу: інтерфаза та мітоз. Визначення поняття "мітоз" як непрямого поділу клітини, найбільш поширеного способу репродукції еукаріотів. Характеристика та особливості процесів поділу: амітоза та мейозу.

презентація , доданий 25.10.2011


Мітоз як непрямий поділ клітини, внаслідок якого утворюються соматичні клітини. Стадії клітинного циклу. Підготовка до поділу еукаріотів. Основні етапи каріокінезу. Поділ цитоплазми з органоїдами між дочірніми клітинами.

презентація , додано 06.11.2013


Періоди та фази клітинного циклу. Послідовне проходження клітиною періодів циклу без пропуску чи повернення до попередніх стадій. Поділ вихідної клітини на дві дочірні клітини. Цикліни та циклін-залежні кінази; розподіл еукаріотичної клітини; мітоз.

контрольна робота , доданий 21.11.2009


Клітинний цикл як період існування клітини від моменту її утворення шляхом поділу материнської клітини до власного поділу чи загибелі. Принципи та методи його регуляції. Етапи та біологічне значення мітозу, мейозу, обґрунтування даних процесів.

презентація , доданий 07.12.2014


Клітина як основна одиниця живого. Хімічний склад клітини, її елементарні частинки та характер протікають усередині процесів. Роль та значення води у життєдіяльності клітини. Етапи енергетичного обміну клітин, реакцій розщеплення (дисиміляції).

реферат, доданий 11.07.2010


рівні організації живої матерії. Клітинна мембрана, поверхневий апарат клітини, її частини та їх призначення. Хімічний склад клітини (білки, їх структура та функції). Обмін речовин у клітині, фотосинтез, хемосинтез. Мейоз та мітоз – основні відмінності.

контрольна робота , доданий 19.05.2010


Історія вивчення клітини. Відкриття та основні положення клітинної теорії. Основні положення теорії Шванна-Шлейден. Методи вивчення клітини. Прокаріоти та еукаріоти, їхня порівняльна характеристика. Принцип компартментації та поверхню клітини.

презентація , додано 10.09.2015


Вивчення процесу мітозу як непрямого поділу клітини та поширеного способу репродукції еукаріотичних клітин, його біологічне значення. Мейоз як редукційний поділ клітини. Інтерфаза, профаза, метафаза, анафаза та телофаза мейозу та мітозу.

презентація , доданий 21.02.2013


Вивчення клітинної теорії будови організмів, основного способу поділу клітин, обміну речовин та перетворення енергії. Аналіз ознак живих організмів, автотрофного та гетеротрофного харчування. Дослідження неорганічних та органічних речовин клітини.